سامانه پشتیبانی خدمات اطلاعات

  اخبار و اعلانات

 آمار

تعداد نشریات161
تعداد شماره‌ها6,533
تعداد مقالات70,519
تعداد مشاهده مقاله124,133,723
تعداد دریافت فایل اصل مقاله97,239,851
بنی کمال, هانیه سادات, ژندی, مهدی, شاکری, ملک, مروج, حسین. (1394). اثر سطوح جیره‌ای فسفولیپیدهای فعال بر پاسخ سامانۀ ایمنی خونی در جوجه‌های نر گوشتی. , 46(3), 263-269. doi: 10.22059/ijas.2015.56420
هانیه سادات بنی کمال; مهدی ژندی; ملک شاکری; حسین مروج. "اثر سطوح جیره‌ای فسفولیپیدهای فعال بر پاسخ سامانۀ ایمنی خونی در جوجه‌های نر گوشتی". , 46, 3, 1394, 263-269. doi: 10.22059/ijas.2015.56420
بنی کمال, هانیه سادات, ژندی, مهدی, شاکری, ملک, مروج, حسین. (1394). 'اثر سطوح جیره‌ای فسفولیپیدهای فعال بر پاسخ سامانۀ ایمنی خونی در جوجه‌های نر گوشتی', , 46(3), pp. 263-269. doi: 10.22059/ijas.2015.56420
بنی کمال, هانیه سادات, ژندی, مهدی, شاکری, ملک, مروج, حسین. اثر سطوح جیره‌ای فسفولیپیدهای فعال بر پاسخ سامانۀ ایمنی خونی در جوجه‌های نر گوشتی. , 1394; 46(3): 263-269. doi: 10.22059/ijas.2015.56420

اثر سطوح جیره‌ای فسفولیپیدهای فعال بر پاسخ سامانۀ ایمنی خونی در جوجه‌های نر گوشتی

علوم دامی ایران
مقاله 5، دوره 46، شماره 3، مهر 1394، صفحه 263-269    اصل مقاله (544.9 K)
نوع مقاله: مقاله پژوهشی
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/ijas.2015.56420
نویسندگان
هانیه سادات بنی کمال1؛ مهدی ژندی* 2؛ ملک شاکری2؛ حسین مروج3
1دانشجوی کارشناسی ارشد، گروه علوم دامی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج
2استادیار گروه علوم دامی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج
3دانشیار، گروه علوم دامی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج
چکیده
این مطالعه برای ارزیابی تأثیرات استفاده از سطوح جیره‌ای منبع فسفولیپیدهای فعال در جیرۀ غذایی بر پاسخ سامانۀ ایمنی جوجه‌های گوشتی، با 180 قطعه جوجۀ نر گوشتی سویۀ راس 308 اجرا شد. جیره‌های آزمایشی شامل سطوح 0، 2/0، 4/0، 6/0، 8/0، 1، 2/1، 4/1، 6/1 درصد منبع فسفولیپیدهای فعال به نحوی تهیه شدند که انرژی قابل سوخت‌وساز، پروتئین و سایر مواد مغذی در آن‌ها یکسان بود. خون‌گیری در 16 روزگی برای سنجش پادتن علیه ویروس نیوکاسل، در 41 روزگی برای سنجش تفریقی گلبول‌های سفید و در 36 روزگی و 45 روزگی برای تست تیتر پادتن علیه پادگن گلبول قرمز گوسفند انجام گرفت. نتایج نشان داد که سطح جیره‌ای منبع فسفولیپیدهای فعال بر اندام‌های لنفاوی، تعداد هتروفیل، لنفوسیت، مونوسیت، بازوفیل، نسبت هتروفیل به لنفوسیت، تیتر آنتی‌بادی‌های G و M به علاوه تیتر آنتی‌بادی ضد نیوکاسل اثر معناداری نداشت. در نتیجه، به نظر می‌رسد که سطوح استفاده‌شدۀ منبع فسفولیپیدهای فعال، اثری بر فراسنجه‌های ایمنی ارزیابی‌شده در این آزمایش نداشتند.
کلیدواژه‌ها
ایمنی؛ پادتن؛ خروس؛ فسفولیپید؛ نیوکاسل
عنوان مقاله [English]
The effects of feeding different dietary levels of active phospholipids on humeral immune system response in male broilers
نویسندگان [English]
Haniyeh Sadat Banikamal1؛ Mahdi Zhandi2؛ Malak Shakeri2؛ Hossin Moravej3
1M. Sc. Student, Department of Animal Science, College of Agriculture and Natural Resources, University of Tehran, Karaj, Iran
2Assistant Professor, Department of Animal Science, College of Agriculture and Natural Resources, University of Tehran, Karaj, Iran
3Associate Profrssor, Department of Animal Science, College of Agriculture and Natural Resources, University of Tehran, Karaj, Iran
چکیده [English]
This study was carried out to investigate the effects of dietary levels of an active phospholipids source on immune system response in broilers using 180 male Ross 308 broilers chicks. Experimental diets containing 0, 0.2, 0.4, 0.6, 0.8, 1, 1.2, 1.4, 1.6 % of active phospholipids were prepared in a way that metabolizable energy, protein and other nutrients was the same in them. Blood samples were collected at days 16 for Newcastle test, day 41 for differential measurement of white blood cells and at days 36 and 45 for SRBC test. The obtained results showed that different levels of active phospholipids source had no significant effect on lymphoid organs, number of heterophil, lymphocyte, monocyte, basophil, heterophil to lymphocyte ratio, IgG and IgM titer as well as anti-Newcastle antibody titer in broilers. In conclusion, it seems that levels of used active phospholipids source had no effect on the evaluated immune parameters in this experiment.
کلیدواژه‌ها [English]
Antibody, broiler, Immunity, newcastle, Phospholipid
مراجع
  1. Akhlghi, A., Zamiri, M. J., Jafari Ahangary, Y. & Atashi, H. (2013). Oral exposure of broiler breeder hens to extract thyroxine to modulates early adaptive immune response in progeny chicks. Poultry Science, 9(2), 1040-1049.
  2. Asaoka, Y., Oka, M. Yoshida, K., Sasaki, Y. & Nishizuka, Y. (1992). Role of lysophosphatidylcholine in T-lymphocyte activation: involvement of phospholipase A2 in signal transduction through protein kinase C. Proceedings of the National Academy of Sciences, 89(14), 6447-6451.
  3. Calder, P. C. (1993). The effects of fatty acids on lymphocyte functions. Brazilian Journal of Medical and Biological Research, 26(9), 901-917.
  4. Calder, P. C. (2003). N− 3 polyunsaturated fatty acids and inflammation: from molecular biology to the clinic. Lipids, 38(4), 343-352.
  5. Calder, P. C. (2005). Polyunsaturated fatty acids and inflammation. Biochemical Society Transactions, 33(2), 423-427.
  6. Calder, P. C. (2006). n−3 polyunsaturated fatty acids, inflammation, and inflammatory diseases. The American Journal of Clinical Nutrition, 83(6), S1505-1519S.
  7. Calder, P. C., Bond, J. A., Harvey, D. J., Gordon, S. & Newsholme, E. A. (1990). Uptake and incorporation of saturated and unsaturated fatty acids into macrophage lipids and their effect upon macrophage adhesion and phagocytosis. The Biochemcal Journal, 269(3), 807-814.
  8. Calder, P. C., Costa-Rosa, L. F. & Curi, R. (1994). Effects of feeding lipids of different fatty acid compositions upon rat lymphocyte proliferation. Life Sciences, 56(6), 455-463.
  9. Exton, J. H. (1997). Phospholipase D: enzymology, mechanisms of regulation, and function. Physiological Reviews, 77(2), 303-320.
  10. 10 Fernandes G, Yunis EJ, Smith J & Good RA (1972) Dietary influence on breeding behaviour, hemolytic anemia and longevity in NZB mice. Proceedings of the Society for Experimental Biology and Medicine 139,1189-1196.
  11. Gonzalez, D. (2008). Effect of dietary fatty acids, time of feeding and immune response in poultry. http://ir.library.oregonstate.edu/xmlui/handle/1957/10225.
  12. Grando, F., Felicio, C., Twardowschy, A., Paula, F., Batista, V., Fernandes, L., Curi, R. & Nishiyama, A. (2009). Modulation of peritoneal macrophage activity by the saturation state of the fatty acid moiety of phosphatidylcholine. Brazilian Journal of Medical and Biological Research, 42(7), 599-605.
  13. Harbige, L., Yeatman, N., Amor, S. & Crawford, M. (1995). Prevention of experimental autoimmune encephalomyelitis in Lewis rats by a novel fungal source of γ-linolenic acid. British Journal of Nutrition, 74(5), 701-715.
  14. Huang, J., Yang, D., Gao, S. & Wang, T. (2008). Effects of soy-lecithin on lipid metabolism and hepatic expression of lipogenic genes in broiler chickens. Livestock Science, 118(1), 53-60.
  15. Isakov, N. (1988). Regulation of T-cell-derived protein kinase C activity by vitamin A derivatives. Cellular Immunology, 115(2), 288-298.
  16. Kaibuchi, K., Takai, Y. & Nishizuka, Y. (1981). Cooperative roles of various membrane phospholipids in the activation of calcium-activated, phospholipid-dependent protein kinase. Journal of Biological Chemistry, 256(14), 7146-7149.
  17. Lawrence, G., Plaskett, B. A., Chem, C. & F. R. I. C. (2003). Phosphatidylcholine. Nutrition Information Services, 8(2), 344-352.
  18. Medawar, P., Hunt, R. & Mertin, J. (1979). An influence of diet on transplantation immunity. Proceedings of the Royal Society of London. Series B. Biological Sciences, 206(1164), 265-280.
  19. Melendez, A. J. & Allen, J. M. (2002). Phospholipase D and immune receptor signalling. Seminars in Immunology, 14(1), 49-55.
  20. Mertin, J. (1981). Essential fatty acids and cell-mediated immunity. Progress in Lipid Research, 20, 851-856.
  21. Miranda, D. T., Batista, V. G., Grando, F. C., Paula, F. M., Felicio, C. A., Rubbo, G. F., Fernandes, L. C., Curi, R. & Nishiyama, A. (2008). Soy lecithin supplementation alters macrophage phagocytosis and lymphocyte response to concanavalin A: a study in alloxan‐induced diabetic rats. Cell Biochemistry and Function, 26(8), 859-865.
  22. Morrow, W., Ohashi, Y., Hall, J., Pribnow, J., Hirose, S., Shirai, T. & Levy, J. (1985). Dietary fat and immune function. I. Antibody responses, lymphocyte and accessory cell function in (NZB x NZW) F1 mice. The Journal of Immunology, 135(6), 3857-3863.
  23. Nishiyama-Naruke, A. & Curi, R. (2000). Phosphatidylcholine participates in the interaction between macrophages and lymphocytes. American Journal of Physiology-Cell Physiology, 278(3), 554-560.
  24. Rotondo, D., Earl, C., Laing, K. & Kaimakamis, D. (1994). Inhibition of cytokine-stimulated thymic lymphocyte proliferation by fatty acids: the role of eicosanoids. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Molecular Cell Research, 1223(2), 185-194.
  25. Zhang, F., Zhao, G. & Dong, Z. (2001). Phosphatidylcholine-specific phospholipase C and D in stimulation of RAW264. 7 mouse macrophage-like cells by lipopolysaccharide. International Immunopharmacology, 1(7), 1375-1384.
آمار
تعداد مشاهده مقاله: 1,916
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 740


سامانه مدیریت نشریات علمی. قدرت گرفته از سیناوب