سامانه پشتیبانی خدمات اطلاعات

  اخبار و اعلانات

 آمار

تعداد نشریات161
تعداد شماره‌ها6,532
تعداد مقالات70,502
تعداد مشاهده مقاله124,116,793
تعداد دریافت فایل اصل مقاله97,221,611
منصوری, مهدی, نقوی, محمد رضا, علیزاده, هوشنگ, محمدی نژاد, قاسم, موسوی, سید احمد, حسینی سالکده, قاسم. (1395). شناسایی و ارزیابی الگوی بیان ژن‌های دخیل در مسیر‌های سیگنال‌دهی در آجیلوپس (Aegilops tauschii) تحت تنش شوری. , 47(2), 205-216. doi: 10.22059/ijfcs.2016.58855
مهدی منصوری; محمد رضا نقوی; هوشنگ علیزاده; قاسم محمدی نژاد; سید احمد موسوی; قاسم حسینی سالکده. "شناسایی و ارزیابی الگوی بیان ژن‌های دخیل در مسیر‌های سیگنال‌دهی در آجیلوپس (Aegilops tauschii) تحت تنش شوری". , 47, 2, 1395, 205-216. doi: 10.22059/ijfcs.2016.58855
منصوری, مهدی, نقوی, محمد رضا, علیزاده, هوشنگ, محمدی نژاد, قاسم, موسوی, سید احمد, حسینی سالکده, قاسم. (1395). 'شناسایی و ارزیابی الگوی بیان ژن‌های دخیل در مسیر‌های سیگنال‌دهی در آجیلوپس (Aegilops tauschii) تحت تنش شوری', , 47(2), pp. 205-216. doi: 10.22059/ijfcs.2016.58855
منصوری, مهدی, نقوی, محمد رضا, علیزاده, هوشنگ, محمدی نژاد, قاسم, موسوی, سید احمد, حسینی سالکده, قاسم. شناسایی و ارزیابی الگوی بیان ژن‌های دخیل در مسیر‌های سیگنال‌دهی در آجیلوپس (Aegilops tauschii) تحت تنش شوری. , 1395; 47(2): 205-216. doi: 10.22059/ijfcs.2016.58855

شناسایی و ارزیابی الگوی بیان ژن‌های دخیل در مسیر‌های سیگنال‌دهی در آجیلوپس (Aegilops tauschii) تحت تنش شوری

علوم گیاهان زراعی ایران
مقاله 6، دوره 47، شماره 2، شهریور 1395، صفحه 205-216    اصل مقاله (699.37 K)
نوع مقاله: مقاله پژوهشی
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/ijfcs.2016.58855
نویسندگان
مهدی منصوری1؛ محمد رضا نقوی* 2؛ هوشنگ علیزاده3؛ قاسم محمدی نژاد4؛ سید احمد موسوی5؛ قاسم حسینی سالکده6
1دانشجوی دکتری، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج
2استاد پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج
3استادیار، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج
4دانشیار گروه زراعت و اصلاح نباتات دانشگاه شهید باهنر کرمان
5گروه سلولهای بنیادی، مرکز تحقیقات علوم سلولی جهاد دانشگاهی، پژوهشگاه رویان، تهران
6دانشیار، بخش ژنومیکس پژوهشکده بیوتکنولوژی کشاورزی کرج
چکیده
شور شدن زمین­های کشاورزی یکی از مهم‌ترین عامل‌های محدودکنندۀ تولیدات کشاورزی و تهدیدکنندۀ امنیت غذایی در کشورهای جهان به­شمار می‌آید. فعال شدن مسیرهای سیگنالی نخستین رخداد در شناسایی تنش­های محیطی برای گیاهان به­شمار می‌آید. شناسایی اجزای شبکۀ سیگنالی در پاسخ به تنش شوری با استفاده از روش RNA Seq در گیاه آجیلوپس به‌عنوان منشأ ژنگان (ژنوم) DD در گندم، اهمیت زیادی دارد. توالی­یابی RNA به همراه استفاده از نرم‌افزار MapMan برای تفسیر عملکردی نتایج بیان ژن روش مناسب برای بررسی‌های ژن‌نامه شناسی (ژنومیکس) کارکردی در گیاهان به شمار می‌آید. لذا در این تحقیق با استفاده از کتابخانۀ تهیه‌شده از RNA استخراج‌شده از گیاهان کنترل و تحت تنش، اقدام به شناسایی و ارزیابی کمی ژن‌های دخیل در فرآیندهای سیگنالی شد. نتایج بیان ژن نشان داد که از بین 4506 رونوشت دارای تغییر بیان معنی­دار، فرآیندهای سیگنالی با 603 عدد BIN (59/11 درصد) بیشترین شمار را به خود اختصاص داد. همچنین مشخص شد که از بین اجزای شبکۀ سیگنالی، گیرندة (رسپتور) کینازها بیشترین شمار (222 عدد BIN) از ژن‌های تغییربیان‌یافته را شامل می­شوند که درواقع بیان­کنندۀ اهمیت آن‌ها است. این تحقیق به‌عنوان یک بررسی بنیادی به شمار می‌آید که زمینه برای انجام بررسی‌های انتقال ژن‌های مقاومت به شوری به گیاه گندم را فراهم می‌کند.
کلیدواژه‌ها
توالی‌یابی؛ شوری؛ فرآیندهای سیگنالی؛ RNA Seq
عنوان مقاله [English]
Expression profiling of genes involved in signaling process in Aegilops tauschii under salinity stress
نویسندگان [English]
mehdi mansouri1؛ Mohamad Reza Naghavi2؛ Houshang Alizadeh3؛ Ghasem Mohammadinejad4؛ Seyed Ahmad Mousavi5؛ Ghasem Hosseini Salekdeh6
1University of Tehran
چکیده [English]
Salinization of crop lands is one of the most important reasons for reduction in productivity and threats food security. Activation of signaling process in plants is the first step during sense environmental cues and stress signals. Identification of the components of plant intracellular signaling mechanisms, pathways, and networks in response to salt stress in Aegilops tauschii (the D genome donor of bread wheat) by transcriptome analysis tools such as RNA Seq method is very worthwhile. RNA Seq method and functional annotation of data by MapMan suite is an efficient strategy to functional genomics analyses. In order to identify and evaluate some genes involved in signaling process, we performed library construction for two cDNA libraries from leaves of seedlings treated with 200 mM NaCl and control. Results of differential expression showed that out of 4506 differentially expressed genes, 603 (11/59%) BINs assigned to signaling process. It also became clear that receptor kinases are the largest number (222 transcripts) of differentially expressed genes in signaling process components. This study is a fundamental research that provide worthwhile functional sequences for gene transferring study to improve salinity tolerant in bread wheat.
کلیدواژه‌ها [English]
salinity, signaling process, sequencing, RNA Seq
مراجع
  1. Ahmad, P. & Prasad, M. N. V. (2012). Environmental Adaptations and Stress Tolerance of Plants in the Era of Climate Change. Springer New York Dordrecht Heidelberg London
  2. 2.       Allen, T., Koustenis, A., Theodorou, G., Somers, D. E., Kay, S. A., Whitelam, G. C. & Devlin, P. F. (2006). Arabidopsis FHY3 specifically gates phytochrome signaling to the circadian clock. Plant Cell, 18, 2506-2516.
  3. Amin, S.,Prentis, P. J.,Gilding, E. K. & Pavasovic, A. (2014). Assembly and annotation of a non-model gastropod (Nerita melanotragus) transcriptome: a comparison of De novo assemblers. BMC Research Notes, 7, 488.
  4. Ashraf, M., Ozturk, M. & Athar H. R. (2009). Salinity and Water Stress: Improving Crop Efficiency. Springer-Verlag, Berlin.
  5. Cardoso-Silva, C. B., Costa, E. A., Mancini, M. C., Balsalobre, T. W. A., Canesin, L. E. C., Pinto, L. R., Carneiro, M. S., Garcia, A. A., de Souza, A. P. & Vicentini, R. (2014). De Novo Assembly and Transcriptome Analysis of Contrasting Sugarcane Varieties. PLoS ONE 9(2), e88462.
  6. Chinnusamy, V., Jagendorf, A. & Zhu, J-K. (2005).Understanding and Improving Salt Tolerance in Plants. Crop Science, 45, 437-448.
  7. Chory, J. (2010). Light signal transduction: an infinite spectrum of possibilities. Plant Journal, 61, 982-991.
  8. Darwish, E., Testerink, C., Khalil, M., El-Shihy, O. & Munnik, T. (2009). Phospholipid signaling responses in salt-stressed rice leaves. Plant Cell Physiology, 50, 986-997.
  9. DeFalco, T. A., Bender, K. W. & Snedden, W. A. (2010). Breaking the code: Ca 2+ sensors in plant signalling. Biochemical Journal, 425, 27-40.
  10. Dodd, A. N., Kudla, J. & Sanders, D. (2010). The language of calcium signalling. Annual Review of Plant Biology, 61, 593-620.
  11. Falkenburger, B. H, Jensen, J. B., Dickson, E. J., Suh, B. C. & Hille, B. (2010). Phosphoinositides: lipid regulators of membrane proteins. Journal of Physiology, 588, 3179-3185.
  12. Gao, Y., Liu, H., An, C., Shi, Y., Liu, X., Yuan, W., Zhang, B., Yang, J., Yu, C. & Gao, H. (2013). Arabidopsis FRS4/CPD25 and FHY3/CPD45 work cooperatively to promote the expression of the chloroplast division gene ARC5 and chloroplast division. Plant Journal, 75, 795-807.
  13. Grabherr, M. G., Haas, B. J., Yassour, M., Levin, J.Z., Thompson, D. A., Amit, I., Adiconis, X., Fan, L., Raychowdhury, R., Zeng, Q., Chen, Z., Mauceli, E., Hacohen, N., Gnirke, A., Rhind, N., di Palma, F., Birren, B. W., Nusbaum, C., Lindblad-Toh, K., Friedman, N. & Regev, A. (2011). Full-length transcriptome assembly from RNA-Seq data without a reference genome. Nature Biotechnology, 29, 644e652.
  14. Hasegawa, P.M., Bressan, R.A., Zhu, J.K. & Bohnert, H.J. (2000). Plant cellular and molecular responses to high salinity. Annual Review of Plant Physiology and Plant Molecular Biology, 51, 463-499.
  15. Hetherington, A. M. & Brownlee, C. (2004). The generation of Ca2+ signals in plants. Annual Review of Plant Biology, 55, 401-427.
  16. Hudson, M., Ringli, C., Boylan, M. T. & Quail, P. H. (1999). The FAR1 locus encodes a novel nuclear protein specific to phytochrome A signaling. Genes and Development, 13, 2017-2027.
  17. Hunt, L., Mills, L. N., Pical, C., Leckie, C.P., Aitken, F. L., Kopka, J., Mueller‐Roeber, B., McAinsh, M. R., Hetherington, A. M. & Gray, J. E. (2003). Phospholipase C is required for the control of stomatal aperture by ABA. Plant Journal, 34, 47-55.
  18. Jia, J., Zhao, S., Kong, X., Li, Y., Zhao, G., He, W., Appels, R., Pfeifer, M,. Tao, Y., Zhang, X., Jing, R., Zhang, C., Ma, Y., Gao, L., Gao, C., Spannagl, M., Mayer, K. F., Li, D., Pan, S., Zheng, F., Hu, Q., Xia, X., Li, J., Liang, Q., Chen, J., Wicker, T., Gou, C., Kuang, H., He, G., Luo, Y., Keller, B., Xia, Q., Lu, P., Wang, J., Zou, H., Zhang, R., Xu, J., Gao, J., Middleton, C., Quan, Z., Liu, G., Wang, J.; International Wheat Genome Sequencing Consortium, Yang, H., Liu, X., He, Z., Mao, L. & Wang, J. (2013). Aegilops tauschii draft genome sequence reveals a gene repertoire for wheat adaptation. Nature, 496, 91-95.
  19. Khokhlatchev, A.V., Canagarajah, B., Wilsbacher, J., Robinson, M., Atkinson, M. Goldsmith, E. & Cobb, M. H. (1998). Phosphorylation of the MAP kinase ERK2 promotes its homodimerization and nuclear translocation. Cell, 93, 605-615.
  20. Langmead, B., Trapnell, C., Pop, M. & Salzberg, S. L. (2009). Ultrafast and memory-efficient alignment of short DNA sequences to the human genome. Genome biology 10:R25.
  21. Li, B. & Dewey, C. N. (2011). RSEM: accurate transcript quantification from RNA-seq data with or without a reference genome. BMC Bioinformatics, 12, 323.
  22. Li, B., Fillmore, N., Bai, Y., Collins, M., Thomson, J.A., Stewart, R. & Dewey, C.N. (2014). Evaluation of de novo transcriptome assemblies from RNA-Seq data. Genome Biology, 15, 553.
  23. Li, W. & Assmann, S. M. (1993). Characterization of a G-protein-regulated outward K+ current in mesophyll cells of Vicia faba L. Proceedings of the National Academy of Sciences. USA, 90, 262-266.
  24. Lin, R. & Wang, H. (2004). Arabidopsis FHY3/FAR1 gene family and distinct roles of its members in light control of Arabidopsis development. Plant Physiology, 136, 4010-4022.
  25. Lohse, M., Nagel, A., Herter, T., May, P., Schroda, M., Zrenner, R., Tohge, T., Fernie, A.R., Stitt, M. & Usadel, A. (2013). Mercator: a fast and simple web server for genome scale functional annotation of plant sequence data. Plant, Cell and Environment, 37(5), 1250-8.
  26. Mahajan, S., Pandey, G.K. & Tuteja, N. (2008). Calcium- and salt-stress signaling in plants: shedding light on SOS pathway. Archives of Biochemistry and Biophysics, 471, 146-158.
  27. Matsuoka, D., Nanmori, T., Sato, K., Fukami, Y., Kikkawa, U. & Yasuda, T. (2002). Activation of AtMEK1, an Arabidopsis mitogen-activated protein kinase kinase, in vitro and in vivo: analysis of active mutants expressed in E. coli and generation of the active form in stress response in seedlings. Plant Journal, 29, 637-647.
  28. Metzker, M.L. (2010). Sequencing technologies the next generation. Nature Reviews Genetics, 11, 31-46.
  29. Mills, L.N., Hunt, L., Leckie, C.P., Aitken, F.L., Wentworth, M., McAinsh, M.R., Gray, J.E. & Hetherington, A.M. (2004). The effects of manipulating phospholipase C on guard cell ABA-signalling. Journal of Experimental Botany, 55, 199-204.
  30. Monneveux, P., Zaharieva, M. & Rekika, D. (2000).The utilisation of Triticum and Aegilops species for the improvement of durum wheat. In: Royo C. (ed.), Nachit M. (ed.), Di Fonzo N. (ed.), Araus J.L. (ed.). Durum wheat improvement in the Mediterranean region: New challenges. Zaragoza: CIHEAM, 2 000. p. 71-81.
  31. Moreton, J., Dunham, S.P. & Emes, R.D. (2014). A consensus approach to vertebrate de novo transcriptome assembly from RNA-seq data: assembly of the duck (Anas platyrhynchos) transcriptome. Frontiers in Genetics, 5, 190.
  32. Mortazavi, A., Williams, B.A., McCue, K., Schaeffer, L. & Wold, B. (2008). Mapping and quantifying mammalian transcriptomes by RNA-seq. Nature Methods, 5, 621-8.
  33. Munns, R. (2013). Hoagland's nutrient solution. Available at: http://prometheuswiki.publish.csiro.au/ tiki-index.php?page=Hoagland%27s+nutrient+solution.
  34. Munns, R. & James, R.A. (2003). Screening methods for salinity tolerance: a case study with tetraploid wheat. Plant Soil, 253, 201-18.
  35. Osakabe, Y., Yamaguchi-Shinozaki, K., Shinozaki, K. & Tran, L.S. (2013). Sensing the environment: key roles of membrane-localized kinases in plant perception and response to abiotic stress. Journal of Experimental Botany, 64(2), 445-458.
  36. Pandey, G.K. (2015). Elucidation of Abiotic Stress Signaling in Plants Functional Genomics Perspectives, Volume 1. Springer Science, New York, USA.
  37. Peng, J.H.H., Sun, D.F. & Nevo, E. (2011). Domestication evolution, genetics and genomics in wheat. Molecular Breeding, 28(3), 281-301.
  38. Petersen, G., Seberg, O., Yde, M. & Berthelsen, K. (2006). Phylogenetic relationships of Triticum and Aegilops and evidence for theorigin of the A, B, and D genomes of common wheat (Triticum aestivum). Molecular Phylogenetics and Evolution, 39, 70-82.
  39. Robinson, M.D., McCarthy, D.J. & Smyth, G.K. (2010). edgeR: a Bioconductor package for differential expression analysis of digital gene expression data. Bioinformatics, 26, 139-140.
  40. Saalbach, G., Natura, G., Lein, W., Buschmann, P., Dahse, I., Rohrbeck, M. & Nagy, F. (1999). The subunit of a heterotrimeric G-protein from tobacco, NtGP_1, functions in K+ channel regulation in mesophyll cells. Journal of Experimental Botany, 50, 53-61.
  41. Sanan-Mishra, N., Tuteja, R. & Tuteja, N. (2006). Signaling through MAP kinase networks in plants. Arch Biochem Biophys, 452, 55-68.
  42. Schachtman, D.P. & Munns, R. (1992). Sodium accumulation in leaves of Triticum species that differ in salt tolerance. Australian Journal of Plant Physiology, 19(3), 331-340.
  43. Serra, T., Figueiredo, D.D., Cordeiro, A.M., Almeida, D.M., Lourenço, T., Abreu, I.A., Sebastián, A., Fernandes, L., Contreras-Moreira, B., Oliveira, M.M. & Saibo, N.J. (2013). “OsRMC, a negative regulator of salt stress response in rice, is regulated by two AP2/ERF transcription factors”. Plant Molecular Biology, 82, 439-455.
  44. Sinha, A.K., Jaggi, M., Raghuram, B. & Tuteja, N. (2011). Mitogen-activated protein kinase signaling in plants under abiotic stress. Plant Signaling and Behavior, 6(2), 196-203
  45. Suh, B.C., Inoue, T., Meyer, T. & Hille, B. (2006). Rapid chemically induced changes of PtdIns(4,5) P2 gate KCNQ ion channels. Science, 314, 1454-1457.
  46. Tang, W., Ji, Q., Huang, Y., Jiang, Z., Bao, M., Wang, H. & Lin, R. (2013). FAR-RED ELONGATED HYPOCOTYL3 and FAR-RED IMPAIRED RESPONSE1 Transcription Factors Integrate Light and Abscisic Acid Signaling in Arabidopsis. Plant Physiology, 163, 857-866.
  47. Thimm, O., Bläsing, O., Gibon, Y., Nagel, A., Meyer, S., Krüger, P., Selbig, J., Müller, L.A., Rhee, S.Y. & Stitt, M. (2004). MAPMAN: a user-driven tool to display genomics data sets onto diagrams of metabolic pathways and other biological processes. The Plant Journal, 37,914-939.
  48. Wang, H. & Deng, X.W. (2002). Arabidopsis FHY3 defines a key phytochrome A signaling component directly interacting with its homologous partner FAR1. EMBO Journal, 21, 1339-1349.
  49. Wang, H. & Wang, H. (2015). Multifaceted roles of FHY3 and FAR1 in light signaling and beyond. Trends in Plant Science, 20(7), 453-61.
  50. Wang, Z., Gerstein, M. & Snyder, M. (2009). RNA-Seq: a revolutionary tool for transcriptomics. Nature reviews Genetics, 10(1), 57-63.
  51. Wu, W-H. & Assmann, S. M. (1994). A membrane-delimited pathway of G-protein regulation of the guard-cell inward K+ channel. In: Proceedings of the National Academy of Sciences USA, 91, 6310-6314.
  52. Wurzinger, B., Mair, A., Pfister, B. & Teige, M. (2011). Crosstalk of calcium-dependent protein kinase and MAP kinase signalling. Plant Signaling and Behavior, 6, 1-5.
  53. Xie, W. & Nevo, E. (2008). Wild emmer: genetic resources, gene mapping and transfer for wheat improvement. Euphytica, 164, 603-614.
  54. Xiong, L., Schumaker, K.S. & Zhu, J-K. (2002). Cell Signaling during Cold, Drought, and Salt Stress. The Plant Cell, S165-S183.
  55. Yang, Z. (2008). Intracellular Signaling in Plants. Annual Plant Reviews Volume33. Blackwell Publishing Ltd.
  56. Zhu, J.K. (2001). Cell signaling under salt stress, water and cold stresses. Current Opinion in Plant Biology, 5, 401-406.
آمار
تعداد مشاهده مقاله: 1,602
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 1,851


سامانه مدیریت نشریات علمی. قدرت گرفته از سیناوب