سامانه پشتیبانی خدمات اطلاعات

  اخبار و اعلانات

 آمار

تعداد نشریات158
تعداد شماره‌ها6,225
تعداد مقالات67,685
تعداد مشاهده مقاله114,999,430
تعداد دریافت فایل اصل مقاله89,675,079
خرازی, سیده مهدیه, تهرانی فر, علی, شریفی, احمد, باقری, عبدالرضا. (1399). تأثیر نور، غلظت ساکارز و موقعیت فلس جفتی بر ریزازدیادی گیاه آماریلیس ‏‏(‏Hippeastrum×johnsonii‏) ‏. , 51(4), 809-821. doi: 10.22059/ijhs.2019.278911.1688
سیده مهدیه خرازی; علی تهرانی فر; احمد شریفی; عبدالرضا باقری. "تأثیر نور، غلظت ساکارز و موقعیت فلس جفتی بر ریزازدیادی گیاه آماریلیس ‏‏(‏Hippeastrum×johnsonii‏) ‏". , 51, 4, 1399, 809-821. doi: 10.22059/ijhs.2019.278911.1688
خرازی, سیده مهدیه, تهرانی فر, علی, شریفی, احمد, باقری, عبدالرضا. (1399). 'تأثیر نور، غلظت ساکارز و موقعیت فلس جفتی بر ریزازدیادی گیاه آماریلیس ‏‏(‏Hippeastrum×johnsonii‏) ‏', , 51(4), pp. 809-821. doi: 10.22059/ijhs.2019.278911.1688
خرازی, سیده مهدیه, تهرانی فر, علی, شریفی, احمد, باقری, عبدالرضا. تأثیر نور، غلظت ساکارز و موقعیت فلس جفتی بر ریزازدیادی گیاه آماریلیس ‏‏(‏Hippeastrum×johnsonii‏) ‏. , 1399; 51(4): 809-821. doi: 10.22059/ijhs.2019.278911.1688

تأثیر نور، غلظت ساکارز و موقعیت فلس جفتی بر ریزازدیادی گیاه آماریلیس ‏‏(‏Hippeastrum×johnsonii‏) ‏

علوم باغبانی ایران
دوره 51، شماره 4، اسفند 1399، صفحه 809-821    اصل مقاله (671.54 K)
نوع مقاله: مقاله پژوهشی
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/ijhs.2019.278911.1688
نویسندگان
سیده مهدیه خرازی* 1؛ علی تهرانی فر2؛ احمد شریفی1؛ عبدالرضا باقری2
1استادیار، گروه بیوتکنولوژی گیاهان زینتی جهاد دانشگاهی خراسان رضوی، مشهد، ایران
2استاد، دانشکده کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد، مشهد، ایران
چکیده
آماریلیس یکی از گیاهان سوخدار زینتی است که تکثیر آن به‌صورت تجاری به کندی صورت می‌گیرد. کاربرد تکنیک‌های کشت بافت می‌تواند راهکاری مناسب جهت افزایش ضریب تکثیر این گیاه زینتی باشد. این پژوهش در قالب دو آزمایش جداگانه انجام شد. در آزمایش اول اثر شرایط نوری و موقعیت فلس جفتی در سوخ مادری بر میزان باززایی فلس‌های جفتی آماریلیس مورد ارزیابی قرار گرفت. در آزمایش دوم اثر غلظت­های مختلف ساکارز (30، 60 و 90 گرم در لیتر) و اثر موقعیت فلس جفتی در سوخ مادری بررسی شد. از محیط‌کشت‌ MS حاوی 5/0 میلی‌گرم در لیتر تنظیم‌کننده رشد BA به همراه 1/0 میلی‌گرم در لیتر تنظیم‌کننده رشد NAA استفاده شد. آزمایش‌ها به‌صورت فاکتوریل در قالب طرح کاملاً‌تصادفی با پنج تکرار انجام شد. نتایج نشان داد در شرایط 16 ساعت روشنایی در مقایسه با شرایط تاریکی، تعداد سوخک بیشتری تولید گردید. همچنین از لحاظ قطر سوخک باززایی‌شده، شرایط روشنایی نسبت به شرایط تاریکی برتری داشت. یافته‌های پژوهش حاضر برتری فلس‌های جفتی لایه‌های خارجی سوخ را در مقایسه با لایه‌های داخلی نشان داد. سوخک‌های باززاشده از فلس‌های جفتی گروه یک قطورتر بودند و وزن خشک بیشتری را به خود اختصاص دادند. کاربرد ساکارز با غلظت 60 گرم در لیتر، منجر به تولید سوخک‌هایی با بیشترین میزان وزن خشک گردید. با افزایش غلظت ساکارز از 60 به 90 گرم در لیتر، قطر سوخک باززاشده به طور معنی داری کاهش یافت. به طورکلی کاربرد محیط‌کشت حاوی 60 گرم در لیتر ساکارز، فلس‌های جفتی گروه یک و شرایط 16 ساعت روشنایی جهت افزایش ضریب تکثیر آماریلیس توصیه می‌گردد.
کلیدواژه‌ها
ساکارز؛ شرایط نوری؛ قطر سوخک؛ موقعیت فلس جفتی
عنوان مقاله [English]
Effect of light condition, sucrose concentration and position of twin scale on ‎maternal bulb on the propagation of twin scale explants of amaryllis (Hippeastrum × ‎johnsonii) under in vitro condition
نویسندگان [English]
Mahdiyeh Kharrazi1؛ Ali Tehranifar2؛ Ahmad Sharifi1؛ Abdolreza Bagheri2
1Assistant Professor, Department of Ornamental Plant Biotechnology, Iranian Academic Center for Education, Culture and ‎Research, Khorasan Razavi, Mashhad, Iran
2Professor, Faculty of Agriculture, Ferdowsi University of Mashhad (FUM), Mashhad, Iran
چکیده [English]
Amaryllis is one of the ornamental bulbous plants that its proliferation is commercially slow. Application of tissue culture techniques can be a suitable way to increase the propagation rate of this ornamental plant. This study was conducted in two separate experiments. In the first experiment, the effect of light condition and position of twin scales in the mother bulb was evaluated on the regeneration of Amaryllis twin scales. In the second experiment, the effects of different concentrations of sucrose (30, 60 and 90 g/l) and the position of twin scales in the mother bulb investigated. MS medium containing 0.5 mg/l BA+0.1 mg/l NAA was used. Experiments were carried out in a factorial arrangement with five replications in a completely randomized design. Results showed that 16-hour light condition lead to production of more bulblets than dark condition. In terms of bulblet diameter, the brightness conditions were superior to the dark condition. The findings of this study showed the superiority of the outermost twin scales compared to innermost twin scales. Bulblets regenerated from twin scale group 1 were thicker than the other treatments and their dry weight was also higher. Application of sucrose at a concentration of 60 g /l to the culture medium resulted in the production of bulblets with the highest dry weight. By increasing the concentration of sucrose from 60 to 90 g/ l, there was a significant decrease in the regenerated bulblet diameter. Generally, application of medium containing 60 g/l sucrose, twin scales group 1 and 16-hour light conditions is recommended to increase the multiplication rate of Amaryllis.
کلیدواژه‌ها [English]
Bulblet diameter, light conditions, position of twin scale, sucrose
مراجع
  1. Asadi, A., Kafi, M., Nabati, J. & Goldani M. (2018). Effect of different light sources in in vitro on growth, morphology and minituber production of potato (Solanum tuberosum L.) in hydroponic conditions. Iranian Journal of Horticultural Science, 48 (4), 933-941. (in Farsi)
  2. Azimzadeh, Z., Mohebodini M. & Chamani E. (2018). Effects of plant growth regulators and ultrasound treatments on in vitro rooting and callogenesis of Lilium ledebourii Boiss. Iranian Journal of Horticultural Science, 48 (4), 845-854. (in Farsi)
  3. Bagheri, A.R. & Safari, M. (1997). Basics of plant tissue culture. R.L.M. Pierik, Ferdowsi University Press, Mashhad. (in Farsi)
  4. Chamani, A., Torabi Giglo, M. & Pourbirami, J. (2009). Effect of naphthalene acetic acid, tidiazuron, sucrose and explant type on production of Narcissus bulblet under in vitro conditions. In: National Conference on Water, Soil, Plant and Mechanization of Agriculture, 2-3 March, Islamic Azad University, Dezful Branch, pp. 145-149. (in Farsi)
  5. Chow, Y.N., Selby, C. & Harvey, B.M.R. (1992). Stimulation by sucrose of Narcissus bulbil formation in vitro. Journal of Horticultural Science, 67(2), 289-293.
  6. Colque, R., Viladomat, F., Bastida, J. & Codina, C. (2002). Micropropagation of the rare Eucrosia stricklandii (Amaryllidaceae) by twin-scaling and shake liquid culture. The Journal of Horticultural Science and Biotechnology, 77(6), 739-743.
  7. De Bruyn, M.H. (1997). Micropropagation of amaryllis (Hippeastrum × hybridum). In: Bajaj, Y.P.S. Biotechnology in agriculture and forestry 40, High-tech and micropropagation VI. Springer Verlag, Heidelberg, New York.
  8. De Bruyn, M.H., Ferreira, D.I., Slabbert, M.M. & Pretorius, J. (1992). In vitro propagation of Amaryllis belladonna. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 31(3), 179-184.
  9. Fatima, N., Ahmad, N., Ahmad, I. & Anis, M. (2015). Interactive effects of growth regulators, carbon sources, pH on plant regeneration and assessment of genetic fidelity using single primer amplification reaction (SPARS) techniques in Withania somnifera L. Applied Biochemistry and Biotechnology, 177, 118-136.
  10. Hosseini, R., Moradnejad, M., Nezami-Alanagh, E., Ashrafi, S. & Ghane-Golmohammadi, F., (2013). Somatic embryogenesis and bulblet production in Narcissus papyraceus cv. Shirazi: effect of plant growth regulators, light intensi-ty, sucrose concentration, methyl jasmonate and anti-gibberellins. Iranian Journal of Genetics and Plant Breeding, 2(1), 27-34. (in Farsi)
  11. Huang, C.W., Okubo, H. & Uemoto, S. (1990). Importance of two scales in propagating Hippeastrum hybridum by twin scaling. Scientia Horticulturae, 42, 141-149.
  12. Jacobs, G., Richard, M., Allderman, L.A. & Theron, K.I. (1992). Direct and indirect organogenesis in tissue cultures of Nerine bowdenii W. Watts. In: VI International Symposium on Flower Bulbs, 325, 475-480.
  13. Jin, S., Yang, L., Lv, P. & Zhou, B. (2004). Changes of endogenous hormones in Lilium pumilum. Journal of Northeast Forestry University, 33(1), 20-22.
  14. Jintapakorn, W. (1998). Growth and development of amaryllis bulb. M.SC. Thesis, Chiang Mai University, Thailand.
  15. Lee, S.Y., Ahn, J.H. & Park, Y.J. (2004). Effects of growth regulators and sucrose concentrations on the bulblet formation through in vitro culture of scale segment in Nerine bowdenii. Journal of Plant Biotechnology, 31(2), 139-143.
  16. Lian, T., Qun-Xian, D., Yong-Qing, W., Lu, L., Shi-Feng, L., Qing-Chun, Z., Jian-Xin, L. & Xiu-Lan, L.V. (2009). Studies on the technique of tissue culture and rapid propagation of bulbils from Lilium regale. Plant Sciences Research, 2(2), 14-19.
  17. Ming, S., Xiao-fan, L., Ying, K., Jin-fang, S. & Qi-xiang, Z. (2012). Polyploidy induction of three Lilium species endemic to China (Lilium pumilum, L. sargentiae, L. tsingtauense). Acta Horticulturae, 935, 82-83.
  18. Mojtahedi, N. & Azadi, P. (2008). Comparison of bulb production in two commercial cultivars of Lilium longiflorum cv. Gironde and L. longiflorum cv. Cassandra in in vitro conditions. Journal of Seed and Plant, 24 (4), 721-738. (in Farsi)
  19. Morán, G.P., Colque, R., Viladomat, F., Bastida, J. & Codina, C. (2003). Mass propagation of Cyrtanthus clavatus and Cyrtanthus spiralis using liquid medium culture. Scientia Horticulturae, 98(1), 49-60.
  20. Padasht Dehkaei, M.T., Khalighi, A., Naderi, R. & Mousavi, A. (2006). Effects of temperature, propagation media and scale position on bulblet regeneration of Chelcheragh lily (Lilium ledebouri Boiss.) by scaling method. Seed and Plant Improvment Journal, 22(3), 383-397. (in Farsi)
  21. Park, N. (1994). Effect of temperature, scale position, and growth regulators on the bulblet formation and growth during scale propagation of Lilium. In: International Symposium on the Genus Lilium, 414, 257-262.
  22. Pierik, R.L.M. & Ippel, B.J. (1977). Plantlet formation from excised bulb scale segments of Nerine. In: International Symposium on Tissue Culture for Horticultural Purposes, 78, 197-202.
  23. Rees, A.R. & Hanks, G.R. (1980). The twin-scaling technique for Narcissus propagation. In: III International Symposium on Flower Bulbs, 109, 211-216.
  24. Rice, L.J., Finnie, J.F. & Van Staden, J. (2011). In vitro bulblet production of Brunsvigia undulata from twin-scales. South African Journal of Botany, 77(2), 305-312.
  25. Rikken, M. (2010). The European market for fair and sustainable flowers and plants. Trade for Development Centre - BTC (Belgian Development Agency), 1-62.
  26. Seabrook, J.E.A. & Cumming, B.G. (1977). The in vitro propagation of amaryllis (Hippeastrum spp. Hybrids). In Vitro, 13(12), 831-836.
  27. Sharifi A., Moshtaghi, N. & Bagheri, A.R. (2010). Applied plant tissue culture. First Edition, Jahad-e-Daneshgahi Publication, Mashhad. (in Farsi).
  28. Staikidou, I., Selby, C. & Hanks, G. (2004). Stimulation of in vitro bulblet growth in Galanthus species with sucrose and activated charcoal. In: V International Symposium on In Vitro Culture and Horticultural Breeding, 725, 421-426.
  29. Staikidou, I., Watson, S., Harvey, B.M. & Selby, C. (2005). Narcissus bulblet formation in vitro: effects of carbohydrate type and osmolarity of the culture medium. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 80(3), 313-320.
  30. Stancato, G.C. & Mazzafera, P. (1995). Effects of light on the propagation and growth of bulbs of Hippeastrum hybridum cv. Apple Blossom (Amaryllidaceae). Scientia Agricola, 52(2), 331-334.
  31. Stancato, G.C., Mazzafera, P. & Magalhães, A.C. (1995). Dry matter partitioning during the propagation of Hippeastrum hybridum as affected by light. Scientia Horticulturae, 62(1), 81-87.
  32. Sultana, J., Sultana, N., Siddique, M.N.A., Islam1, A.K.M.A., Hossain, M.M. & T., Hossain. (2010). In vitro bulb production in hippeastrum (Hippeastrum hybridum). Journal of Central European Agriculture, 11(4), 469-474.
  33. The Swedish chambers of commerce. (2011). Market report focus on the EU and Swedish market for Floricultural Products, 1-31.
  34. Tipirtamaz, R. (2003). Rooting and acclimatization of in vitro micropropagated snowdrop (Galanthus ikariae Baker.) bulblets. Akdeniz universitesi Ziraat Fakültesi Dergisi, 16(2), 121-126.
  35. Tombolato A.F.C., Azevedo C. & Nagai V. (1994). Effects of auxin treatments on in vivo propagation of Hippeastrum hybridum Hort. by twin scaling. HortScience, 29(8), 922-924.
  36. Trinklein, D. (2009). Amaryllis: an alternative plant for the holidays. Division of Plant Sciences, 15(12), 91.
  37. Van Aartrijk, J. & Van der Linde, P.C.G. (1986). In vitro propagation of flower-bulb crops. Tissue Culture as a Plant Production System for Horticultural Crops, 317-331.
  38. Varshney, A., Dhawan, V. & Srivastava, P.S. (2000). A protocol for in vitro mass propagation of Asiatic hybrids of lily through liquid stationary culture. In vitro Cellular and Developmental Biology Plant, 36(5), 383-391.
  39. Witomska, M., Łukaszewska, A. & Wojtowicz, M. (2008). Micropropagation of Hippeastrum × chmielii Chm. from scale and scape explants. Propagation of Ornamental Plants, 8(3), 158-160.
  40. Yanagawa, T. & Osaki, T. (1996). In vitro propagation of bulblets and elimination of viruses by bulb scale cultures of Hippeastrum hybridum bulbs. Plant Tissue Culture Letters, 13(2), 147-152.
  41. YongKweon, Y. & ByungWoon, K. (2006). Effects of scale position and cutting condition on bulblet growth in perforated polyethylene film bag in scaling of Lilium longiflorum 'Gelria'. Korean Journal of Horticultural Science & Technology, 24(2), 279-284.
 

آمار
تعداد مشاهده مقاله: 455
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 285


سامانه مدیریت نشریات علمی. قدرت گرفته از سیناوب