پیوندهای مفید
اخبار و اعلانات
آمار
| تعداد نشریات | 161 |
| تعداد شماره‌ها | 6,532 |
| تعداد مقالات | 70,500 |
| تعداد مشاهده مقاله | 124,086,325 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 97,189,695 |
تأثیر نور، رژیم آبیاری و نحوة جداسازی پریکارپ بر خصوصیات فیزیولوژیک نهالهای حرا | ||
| نشریه جنگل و فرآورده های چوب | ||
| دوره 76، شماره 2، شهریور 1402، صفحه 181-190 اصل مقاله (600.43 K) | ||
| نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/jfwp.2023.357461.1246 | ||
| نویسندگان | ||
| سید افسانه محبی1؛ مرضیه رضایی2؛ مریم مصلحی* 3 | ||
| 1مهندسی منابع طبیعی، مدیریت و کنترل بیابان، دانشگاه هرمزگان، هرمزگان، بندرعباس، ایران. | ||
| 2گروه مهندسی منابع طبیعی، دانشکدة کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه هرمزگان، هرمزگان، بندرعباس، ایران. | ||
| 3بخش تحقیقات منابع طبیعی، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان هرمزگان، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندر عباس، ایران. | ||
| چکیده | ||
| تولید نهال در نهالستان، بدون تنش، از گامهای اولیه تولید نهال استاندارد است؛ از اینرو، اثرات حذف پریکارپ، رژیمهای آبیاری، نور و اثرات متقابل آنها بر خصوصیات فیزیولوژیک نهالهای حرا Avicennia marina (Forssk.) Vierh در نهالستان (استان هرمزگان، بندر سیریک) مورد بررسی قرار گرفت. بدین‌منظور، تیمارهای حذف پریکارپ (دستی، آب شیرین، 50 و 100 درصدآب دریا)، آبیاری منظم (یک بار و دوبار در روز، یک روز و دو روز درمیان)و شدت نور (100، 75، 50، 25 و صفر درصد) بر پروپاگولهای جمع‌آوری شده اعمال و محتوای کلروفیل (a وb ) و کاروتنوئید برگهای نهال حرا اندازهگیری شد. تجزیه و تحلیل با استفاده از آزمون GLM انجام شد. براساس نتایج، اعمال تیمارهای مختلف حذف پریکارپ، آبیاری و نور سبب تغییرات معنیداری در مشخصههای فیزیولوژیک (کلروفیل a، کلروفیل b و کاروتنوئید) شد (0.01>P). حذف پریکارپ با استفاده از آب شیرین و 50 درصد آب دریا، رژیم آبیاری دوبار در روز، یکبار در روز و شدت نور 50 و 75 درصد، منجر به تولید بیشترین مقدار محتوای کلروفیل در نهالها شد. بیشترین مقادیر کاروتنوئید نیز در تیمار 100 درصد آب دریا جهت حذف پریکارپ، نور صفر درصد و آبیاری دو روز در میان ثبت شد. بررسی اثرات متقابل (نور×پریکارپ) نشان داد کاروتنوئید در نور صفر و جداسازی با 100 درصد آب دریا بیشترین مقدار را دارد. بر اساس نتایج، نهالهای حرا در نور متوسط، جداسازی پریکارپ با آب 50 درصد دریا و آبیاری یک و دو بار در روز بهترین شرایط فعالیت فیزیولوژیک و تولید را دارند بنابراین توصیه میشود از نتایج فوق، در تولید نهال حرا در نهالستان استفاده شود. | ||
| کلیدواژه‌ها | ||
| پروپاگول؛ تیمار؛ جنگل مانگرو؛ کاروتنوئید؛ کلروفیل | ||
| عنوان مقاله [English] | ||
| Effects of light, irrigation regimes and pericarp removal on grey mangrove seedling physiological characteristics | ||
| نویسندگان [English] | ||
| Seyedeh Afsaneh Mohebi1؛ Marzieh Rezai2؛ Maryam Moslehi3 | ||
| 1Natural Resources Engineering, Desert Management and Control, University of Hormozgan, Hormozgan, Bandarabass, Iran. | ||
| 2Department of Natural Resources Engineering, Faculty of Agriculture and Natural Resources, University of Hormozgan, Hormozgan, Bandarabass, Iran. | ||
| 3Research Division of Natural Resources, Hormozgan Agricultural and Natural Resources Research and Education Center, AREEO, Bandarabbas, Iran. | ||
| چکیده [English] | ||
| The production of seedlings with no stress is the first step in the nursery. Hence, the effects of pericarp removal, irrigation treatments, light, and their interaction on the physiological characteristics of grey mangrove seedlings were investigated in the nursery (Hormozgan province- Sirik Port). The aim of this study was to investigate the content of chlorophyll (a and b) and carotenoids in the leaves of grey mangrove seedlings using pericarp removal treatments (manual, fresh water, 50% seawater, 100% seawater), regular irrigations (twice a day, once a day, every other day, and every two days), and light intensities (100, 75, 50, 25, and zero percent). The analysis was performed using the GLM test. Based on the results, applying different treatments of pericarp removal, irrigation, and light treatments led to significant changes in physiological parameters (chlorophyll a, chlorophyll b, and carotenoids) (p<0.01). Removing the pericarp using fresh water and 50% seawater, irrigation regimes (twice a day and once a day), and light intensities (50 and 75%) caused the highest amount of chlorophyll content in seedlings. Furthermore, the highest amounts of carotenoids were observed in the 100% seawater treatment for pericarp removal, absence of light (0% light), and every two days irrigation treatment. In addition, the interaction effects (light × pericarp) indicated that carotenoids had the highest amount in the absence of light and pericarp removal using 100% seawater. Additionally, grey mangrove seedlings under moderate light, pericarp removal using 50% seawater, and once or twice a day irrigation treatments provide appropriate conditions for their activities. Therefore, it is recommended to use the above results in the production of grey mangrove seedlings in the nursery. | ||
| کلیدواژه‌ها [English] | ||
| Carotenoid, Chlorophyll, Mangrove forest, Propagule, Treatment | ||
| مراجع | ||
|
[1] Alongi, D.M. (2009). The energetics of mangrove forest. Springer. Netherlands. [2] Sari, A., Ogu, B., & Bilgic, A. (2006). Breaking seed dormancy of laurel (Laurus nobilis L.). New Forests, 31: 403-408. [3] Todd, A., Peterson, T.M., Blackmer, D.D., Francis, J., & Schepers, S. (2005). Using a chlorophyll meter to improve N management. Soil Science, 93: 1171-1177. [4] Leoncio, C., Clinton, O.C., & Simpson, L.K. (1976). Light dependent carotenoid synthesis in tomato. Fruit Chemistry, 24: 46-59. [5] Naidoo, G., Tuffers, A.V., & von Willert, D.J. (2002). Changes in gas exchange and chlorophyll fluorescence characteristics of two mangroves and a mangrove associate in response to salinity in the natural environment. Trees, 16: 140-146. [6] Lopez-Hoffman, L., DeNoyer, J., Monroe, I., Shaftel, R., Anten, N., Martinez-Ramos, M., & Ackerly, D. (2006). Mangrove seedling net photosynthesis, growth and survivorship are interactively affected by salinity and light. Biotropica, 38(5): 606-616. [7] Zhu, D., Hui, D., Huang, Z., Qiao, X., Tong, S., Wang, M., Yang, Q., & Yu, S. (2021). Comparative impact of light and neighbor effect on the growth of introduced species Sonneratia apetala and native mangrove species in China: implications for restoration. Restoration Ecology, 30(3): e13522. [8] Moslehi, M., Salmanmahiny, A., Yaghoubzadeh, M., Mikaeili Tabrizi, A., & Danehkar, A. (2021). Comparison of heavy metals concentration in sediments and vegetative organs of two species of Grey and Red mangrove. Journal of Wood and Forest Science and Technology, 28(4):119-134. [9] Purnobasuki, H., & Utami, E. (2016). Seed germination of Avicennia marina (Forsk.) Vierh. By pericarp removal treatment. Biotropica, 23(2): 74-83. [10] Arnon, A.N. (1967). Method of extraction of chlorophyll in the plants. Agronomy Journal, 23(1): 112-121. [11] Daycem, K., Rabiaa Manel, S., Sameh, A., Dhafer, L., Mokhtar, H., & Jalloul, B. (2013). Composition and anti-oxidant, anti-cancer and anti-inflammatory activities of Artemisia herba-alba, Ruta chalpensis L. and Peganum harmala L. Food and Chemical Toxicology, 55: 202-208. [12] Ball, M.C., & Pidsley, S.M. (1995). Growth responses to salinity in relation to distribution in two mangrove species, Sonneratia alba and Sonneratia lanceolata, in northern Australia. Functional Ecology, 9: 77-85. [13] Nurzaman, M., Abadi, S.A., Setiawati, T., & Mutaqin, A.Z. (2018). Characterization of the phytochemical and chlorophyll content as well as the morphology and anatomy of the Rhizophoraceae family in the mangrove forest in Bulaksetra, Pangandaran. In AIP conference proceedings, (2021 (1): 030015). AIP Publishing LLC. [14] Munns, R. (2002). Comparative physiology of salt and water stress. Plant, Cell and Environment, 25(2): 239-250. [15] Clough, B.F. (1984). Growth and salt balance of the mangroves Avicennia marina and Rhizophora stylosa in relation to salinity. Australian Journal of Plant Physiology, 11(5): 419-430. [16] Mitra, A., & Banerjee, K. (2010). Pigments of Heritiera fomes seedlings under different salinity conditions: perspective sea level rise. Mesopotamian Journal of Marine Sciences, 25(1): 1-10. [17] Haung, B. (2001). Involvement of antioxidants and lipid peroxidation in the adaptation two-season grasses to localized drought stress. Environmental and Experimental Botany, 45(2): 105-114. [18] Younis, M.E., El-Shahaby, O.A., Abo-Hamed, S.A., & Ibrahim, A.H. (2000). Effects of water stress on growth, pigments and 14 CO2 assimilation in three sorghum cultivars. Agronomy Crop Science, 185(2): 73-82. [19] Tatrai, Z.A., Sanoubar, S., Pluhár, Z., Mancarella, S., Orsini, F., & Gianquinto, G. (2016). Morphological and Physiological Plant Responses to Drought Stress in Thymus citriodorus. International Journal of Agronomy, 1-8. [20] Menon, G.G., & Neelakantan, B. (1992). Chlorophyll and light attenuation from the leaves of mangrove species of Kali estuary. Indian Journal of Marine Sciences, 21(1): 13-16. [21] Pandey, D.M., Kang, K.H., & Yeo, U.D. (2005). Effects of excessive photon on the photosynthetic pigments and violaxanthin de epoxidase activity in the xanthophylls cycle of spinach leaf. Plant Science, 168: 161-166. [22] Wolf, F.T. (1963). Effects of light and darkness on biosynthesis of carotenoid pigments in wheat seedlings. Plant Physiology, 38(6): 649-652. | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 145 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 164 |
||