
تعداد نشریات | 162 |
تعداد شمارهها | 6,693 |
تعداد مقالات | 72,239 |
تعداد مشاهده مقاله | 129,215,308 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 102,043,666 |
شناسایی قارچهای همراه خشکیدگی سرشاخه درختان میوه گرمسیری در استانهای سیستان و بلوچستان و کرمان | ||
دانش گیاهپزشکی ایران | ||
دوره 55، شماره 1، شهریور 1403، صفحه 137-158 اصل مقاله (1.5 M) | ||
نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/ijpps.2025.380854.1007064 | ||
نویسندگان | ||
عادل پردل* 1؛ امیررضا امیرمیجانی2؛ مهدی آزادوار3؛ موسی نجفی نیا4 | ||
1بخش تحقیقات گیاهپزشکی، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی بلوچستان، ایرانشهر، ایران. | ||
2گروه گیاهپزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه جیرفت، جیرفت، ایران. | ||
3بخش تحقیقات گیاهپزشکی، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی کرمان، کرمان، ایران. | ||
4بخش تحقیقات بیماریهای گیاهی، موسسه تحقیقات گیاهپزشکی، تهران، ایران. | ||
چکیده | ||
این پژوهش با هدف شناسایی قارچ های همراه با بیماری سرخشکیدگی برخی درختان میوه گرمسیری از قبیل چیکو، کنار و گواوا در استانهای سیستان و بلوچستان و کرمان انجام شد. در طول سالهای 1401 و 1402 از شاخه برخی درختان میوه گرمسیری دارای علائم خشکیدگی سرشاخه در استانهای یادشده نمونه برداریهای انجام گردید.. خالصسازی جدایهها به روش تک اسپور و نوک ریسه انجام شد. در مجموع، 71 جدایه از 150 نمونه گیاهی از شاخه درختان دارای نشانه های سرخشکیدگی جداسازی و براساس صفات ریخت شناختی، مورد شناسایی مقدماتی قرار گرفتند. در نهایت، پنج جدایه با ویژگیهای ریختشناختی متفاوت جهت استخراج دی ان ای (ِDNA) و تعیین ترادف نوکلئوتیدی انتخاب شدند. برای این منظور، ناحیه ITS (ITS1-5.8S-ITS2) و بخشی از ژن فاکتور رونویسی 1-آلفا (tef1-α) تکثیر و ترادفیابی نوکلئوتیدی شد. واکاویهای تبارزایی برای جدایههای جنس Lasiodiplodia بر اساس نواحی ITS و tef1-α و برای جدایههای Neocosmospora براساس ناحیه ژنی tef1-α انجام گردید. بر اساس نتایج به دست آمده، گونه N. solani از درختان کنار، چیکو و گواوا و گونه L. theobromae از درخت کنار برای اولین بار از ایران گزارش میشوند. | ||
کلیدواژهها | ||
جنوب شرق ایران؛ نمونهبرداری؛ ریخت شناسی؛ تبارشناسی؛ Lasiodiplodia؛ Neocosmospora | ||
عنوان مقاله [English] | ||
Identification of fungal species associated with dieback of tropical fruit trees in Sistan and Baluchestan and Kerman provinces | ||
نویسندگان [English] | ||
Adel Pordel1؛ Amirreza Amirmijani2؛ Mehi Azadvar3؛ Mousa Najafiniya4 | ||
1Iranian Research Institute of Plant ProtectionBaluchestan Agricultural and Natural Resources Research and Education Center, AREEO, Iranshahr, Iran | ||
22. Department of Plant protection. Faculty of Agriculture, University of Jiroft, Jiroft. | ||
3Plant Protection Research Department, Kerman Agricultural and Natural Resources Research and Education Center, AREEO, Kerman, Iran | ||
4Plant Diseases Research Department, Iranian Research Institute of Plant Protection, AREEO, Tehran, Iran. | ||
چکیده [English] | ||
The study aimed to isolate and identify fungi associated with die-back of some tropical fruit trees including Christ’s thorn jujube, Chico, and Guava, having die-back symptoms in Sistan and Baluchistan and Kerman Province. During 2022 and 2023, fungal isolation was done using a single spore and hyphal tip method. Seventy-one isolates with die-back symptoms were obtained from 150 samples and identified by morphological criteria. Finally, five fungal isolates with distinct morphological characteristics were selected for DNA extraction and nucleotide homology determination. To confirm the morphological identification, the ITS1-5.8S-ITS2 (ITS) and Elongation factor1-α (tef1-α) genomic regions were sequenced. Maximum Parsimony method for Lasiodiplodia isolates (ITS and tef-1α gene regions) and Neocosmospora isolates (tef1-α) in phylogeny analysis was used. The identified species in most locations included Neocosmospora solani on Christ’s thorn jujube, Chico and Guava, and Lasiodiplodia theobromae on Christ’s thorn jujube, which is reported for the first time in Iran. | ||
کلیدواژهها [English] | ||
Southeast of Iran, Sampling, Morphology, Phylogeny, Tropical fruits, Lasiodiplodia, Neocosmospora | ||
مراجع | ||
بی نام (1401). محصولات باغی، وزارت جهاد کشاورزی، معاونت برنامهریزی و اقتصادی، مرکز فناوری اطلاعات و ارتباطات، تهران. پردل، عادل (1401). بررسی نقش عوامل قارچی در زوال ناگهانی نخل خرما در جنوب شرق ایران. پروژه پژوهشی، موسسه تحقیقات گیاهپزشکی کشور. شکاری اسفهلان، اعظم.، میرزائی، محمدرضا.، گودرزی، آزاده.، اصلاحی، محمدرضا.، کرمپور، فرزاد.، ضرغامی، سارا (1399). بررسی نقش عوامل قارچی در عارضه خشکیدگی برگ خرما. پروژه پژوهشی، موسسه تحقیقات گیاهپزشکی کشور.
REFERENCES Abdollahzadeh, J., Javadi, A., Mohammadi Goltapeh, E., Zare, R., & Phillips, A. J. L. (2010). Phylogeny and morphology of four new species of Lasiodiplodia from Iran. Persoonia, 25, 1–10. Alymanesh, M., Falahatirastegar, M., Jafarpour, B., & Mehdikhani Moghadam, E. (2006). Detection of Fusarium solani f. sp. cucurbitae race 1 in cucurbits plants of Khorasan Razavi, Northern Khorasan and Fars Provinces. Proceedings of the 17th Iranian Plant Protection Congress, vol. II, 2–5 Sept., Karaj, Iran: 203. Ayoubi, N., & Soleimani, MJ. (2015). Strawberry fruit rot caused by Neopestalotiopsis iranensis sp. nov., and N. mesopotamica. Current Microbiology, 72, 329–336. Basavand, E., Pakdin-Parizi, A., & Mirhosseini, H. A. et al. (2020). Occurrence of leaf spot disease on date palm caused by Neopestalotiopsis clavispora in Iran. Journal Plant Pathology, 102, 959. Boerema, G. H. (2004). Phoma identification manual: differentiation of specific and infra-specific taxa in culture. CABI. Chen, Q., Jiang, J., Zhang, G., Cai, L., & Crous, P. W. (2015). Resolving the Phoma enigma. Studies in Mycology, 82, 137–217. Crous, P. W. (1998). Mycosphaerella spp. and their anamorphs associated with leaf spot diseases of Eucalyptus. Mycologia Memoir, 21, 1−170. Crous, P. W., Carris, L. M., Giraldo, A., Groenewald, J. Z., Hawksworth, D. L., Hemández-Restrepo, M., Jaklitsch, W. M., Lebrun, M.-H., Schumacher, R. K., & Stielow, J. B. (2015). The genera of fungi-fixing the application of the type species of generic names-G 2: Allantophomopsis, Latorua, Macrodiplodiopsis, Macrohilum, Milospium, Protostegia, Pyricularia, Robillarda, Rotula, Septoriella, Torula, and Wojnowicia. IMA fungus, 61, 163–198. Crous, P. W., Wingfield, M. J., Guarro, J., Cheewangkoon, R., Van der Bank, M., Swart, W., Stchigel, A., Cano-Lira, J., Roux, J., & Madrid, H. (2013). Fungal Planet description sheets: 154–213. Persoonia-Molecular Phylogeny and Evolution of Fungi, 311, 188–296. Crous, P., Braun, U., Schubert, K., & Groenewald, J. (2007). Delimiting Cladosporium from morphologically similar genera. Studies in Mycology, 581, 33–56. Daengsuwan, W., Wonglom, P., Arikit, S., & Sunpapao, A. (2021). Morphological and molecular identification of Neopestalotiopsis clavispora causing flower blight on Anthurium andraeanum in Thailand. Horticultural Plant Journal, 7, 573–578. Dehghani, K., Amirmijani, A. R., & Pordel, A. (2022). Fungal species associated with leaf spot of mango trees in Iran. Mycologia Iranica, 9, 75–83. Dehghani, K., Amirmijani, A., & Pordel, A. (2024). Identification and pathogenicity of fungal species associated with leaf spot of mango trees in the south of Iran. Journal of Advances in Plant Protection, 1, 1–8. Edgar, R. C. (2004). MUSCLE: a multiple sequence alignment method with reduced time and space complexity. BMC Bioinformatics, 5, 113 Ershad, Dj. (2009). Fungi of Iran. Ministry of Jihad-e-Agriculture Agricultural Research, Education and Extension Organization Iranian Research Institute of Plant Protection. Pp. 558. Leslie, J., & Summerell, B. (2006). The Fusarium Laboratory Manual Blackwell Publishing Professional. Ames, IA, USA. Félix-Gastélum, R., Herrera-Rodríguez, G., Martínez-Valenzuela, C., Longoria-Espinoza, R. M., Gerardo-Lugo S. S., Tovar-Pedraza, J. M., Maharachchikumbura, S. S. N., Apodaca-Sánchez, M. A., Correia, K. M., Sauceda-Acosta, K. C., Camacho-Tapia, M., Hyde, K. H., Marraiki, N., Elgorban, A. M., & Beltrán-Peña, H. (2020). Characterization of Neopestalotiopsis species associated with mango grey leaf spot disease in Sinaloa, Mexico. Pathogens, 9(10), 788. Gerlach, W., & Nirenberg, H. (1982). The genus Fusarium–a pictorial atlas. Mitteilungen aus der Biologischen Bundesanstalt für Land-und Forstwirtschaft Berlin-Dahlem, 209. Germany: Kommissionsverlag Paul Parey. Goudarzi, A., & Moslehi, M. (2020). Distribution of a devastating fungal pathogen in mangrove forests of southern Iran. Crop Protection, 128, 104987. O’Donnell, K., Kistler, H. C., Cigelnik, E., & Ploetz, R. C. (1998). Multiple evolutionary origins of the fungus causing Panama disease of banana: concordant evidence from nuclear and mitochondrial gene genealogies. Proceedings of the National Academy of Sciences, 95(5), 2044-2049. Ho, W.C. & W.H. Ko. (1997). A simple method for obtaining single-spore isolates of fungi. Botanical Bulletin of Academia Sinica, 38, 41−44. Ismail, A., Cirvilleri, G., Lombard, L., Crous, P., Groenewald, J., & Polizzi, G. (2013). Characterisation of Neofusicoccum species causing mango dieback in Italy. Journal of Plant Pathology, 955, 549–557. Mansoori, B., & Kord, M. (2006). Yellow death: a disease of date palm in Iran caused by Fusarium solani. Journal of Phytopathology, 154 (2), 125–127. Majidi, Z., Goudarzi, A., Shamili, M., Bagheri, A., & Seyahooei-Akbari, M. (2021). High distribution rate of an emerging fungal pathogen on mango: A case study from southern Iran. Crop Protection, 139, 105342. Mirhoseini Moghadam, S. A. & Fathi, J. (1993). Crown rot and shoot die back of imported tea stocks from Japan. Proceedings of the 11th Iranian Plant Protection Congress. 28 Aug.–2 Sept., Rasht, Iran:173. Pordel, A. Dehghani, K. Amirmijani, A. R., & Miri, K. (2023). Identification and pathogenicity of Fusarium sensu lato species causing wilting and leaf spot of banana in South of Iran. Iranian Journal of Plant Pathology, 58, 96–108. Rehner S. (2001). Primers for Elongation Factor 1-α (EF1-α). http://ocid.NACSE.ORG/research/deephyphae/EF primer.pdf. Roozaneh, F. Mohammadi, H. Sohrabi, M. (2022). Phaeoacremonium species associated with canker and dieback of guava (Psidium guajava L.) trees in Iran. 24th Iranian Plant Protection Congress. 3-6 Sep. 2022, IRIPP, Tehran. 642-643. Roozaneh, F. Mohammadi, H. (2023). Isolation and identification of Stilbocrea banihashemiana and Stilbocrea gracilipes from chico (Manilkara zapota) trees showing dieback symptoms in Sistan and Baluchestan province. 5th Iranian Mycological Congress., August 2023. Tabriz, 163. Shinde, H. P. (2020). Studies on some pathogenic fungal spores and disease incidence over guava fruit orchard at Nasik, M.S. Plant Archives, 20, 2613–2617. Tamura, K., Peterson, D., Peterson, N., Stecher, G., Nei, M., & Kumar, S. (2011). MEGA5: molecular evolutionary genetics analysis using maximum likelihood, evolutionary distance, and maximum parsimony methods. Molecular biology and evolution, 28, 2731–2739. Zhong, S., & Stefenson, B. J. (2001). Virulence and molecular diversity in Cochliobolus sativus. Phytopathology, 91, 469–476. White T. J., Bruns T. D., Lee S. and Taylor S. 1990. Amplification and direct sequencing of fungal ribosomal RNA genes for phylogenetics pp: 315–322 In: M.A. Innis D.H., Gelfand J.J. Sninsky, and T.J. White (Eds). PCR - Protocols and Applications - A Laboratory Manual, Academic Press, New York, USA. . https://doi.org/10.1016/B978-0-12-372180-8.50042-1 | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 286 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 24 |