| تعداد نشریات | 127 |
| تعداد شمارهها | 7,195 |
| تعداد مقالات | 77,225 |
| تعداد مشاهده مقاله | 157,167,992 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 118,379,432 |
ارزیابی سطوح مختلف لسیتین سویا بر نگهداری برون تنی اسپرم بوقلمون | ||
| علوم دامی ایران | ||
| دوره 56، شماره 3، مهر 1404، صفحه 479-487 اصل مقاله (1.91 M) | ||
| نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/ijas.2025.384000.654031 | ||
| نویسندگان | ||
| ارمین توحیدی* 1؛ طوبی ندری2 | ||
| 1گروه علوم دامی دانشکده کشاورزی دانشگاه تهران. کرج. ایران | ||
| 2گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی دانشگاه ارومیه | ||
| چکیده | ||
| این مطالعه به منظور بررسی سطوح مختلف لسیتین سویا در رقیق کننده منی بر ویژگیهای کیفی اسپرم بوقلمون نژاد برنز فرانسه در شرایط نگهداری برونتنی انجام شد. نمونههای منی از پنج قطعه بوقلمون سنگین وزن نژاد برنز فرانسه در سن 36 هفتگی جمعآوری شدند. پس از ارزیابیهای اولیه(جنبایی بالای 70 درصد) با یکدیگر مخلوط و به چهار قسمت مساوی تقسیم شده و هر قسمت با یکی از رقیقکنندههای زیر رقیق شد: 1) رقیقکننده شاهد( 10% زرده تخم مرغ)، 2) رقیقکننده حاوی 1% لسیتین، 3) رقیق کننده حاوی 2% لسیتین، 4) رقیقکننده حاوی 3% لسیتین. فراسنجههای مختلف اسپرم شامل جنبایی کل و پیشرونده، یکپارچگی و فعالیت غشای پلاسمایی 3 ساعت پس از نگهداری در دمای 4 درجه سانتیگراد ارزیابی شدند. بر اساس نتایج بدست آمده، رقیقکننده بر پایه زرده تخممرغ و رقیقکننده حاوی 2% لسیتین از نظر جنبایی کل بیشترین درصد را نشان دادند(5/77%). رقیق کننده برپایه زرده تخم مرغ بالاترین درصد جنبایی پیشرونده را نداشت(5/61%). اگرچه، تفاوت معنیداری با سایر تیمارها نشان نداد. نتایج فعالیت غشاء نشان داد که تیمار حاوی 2 درصد لسیتین بیشترین درصد را با اختلاف معنیداری نشان داد (85%)(05/0< P). همچنین، ارزیابی زندهمانی و ریخت شناختی اسپرم تحت تاثیر تیمارها قرار نگرفت. بنابراین، به نظر میرسد رقیق کننده برپایه زرده تخممرغ و رقیقکننده حاوی2 % لسیتین سویا اثرات منفی نگهداری برونتنی اسپرم بوقلمون در دمای 4 درجه سانتیگراد را کاهش میدهند. | ||
| کلیدواژهها | ||
| بوقلمون؛ رقیق کننده؛ اسپرم؛ لسیتین سویا؛ زرده تخم مرغ | ||
| عنوان مقاله [English] | ||
| Evaluation different levels of soy lecithin on in vitro preservation of turkey sperm | ||
| نویسندگان [English] | ||
| Armin Towhidi1؛ Touba Nadri2 | ||
| 1Department of Animal Science, Faculty of Agriculture, University of Tehran. Karaj. Iran | ||
| 2Department of Animal Science, Faculty of Agriculture, Urmia University | ||
| چکیده [English] | ||
| This study was conducted in order to investigate different levels of soy lecithin in semen diluent on the qualitative characteristics of turkey sperm in in vitro storage conditions. Semen samples were collected from five heavy turkeys of the French bronze breed at the age of 36 weeks. After initial evaluations (more than 70% dilution), they were mixed together and divided into four equal parts, and each part was diluted with one of the following diluents: 1) Control medium (10% egg yolk), 2) medium containing 1% lecithin, 3) medium containing 2% lecithin, 4) medium containing 3% lecithin. Different sperm parameters including total and progressive motility, integrity and plasma membrane activity were evaluated 3 hours after storage at 4°C. According to the obtained results, egg yolk-based medium and medium containing 2% lecithin showed the highest percentage of total motility (77.5%). Egg yolk-based medium showed the highest percentage of progressive motility (61.5%). However, there was no significant difference with other treatments. The results of the membrane activity showed that the treatment containing 2% lecithin showed the highest percentage with a significant difference compared to other treatments (85%) (P<0.05). Also, the evaluation of sperm viability and morphology was not affected by the treatments. Therefore, it seems that the egg yolk-based medium and the medium containing 2% soy lecithin reduce the negative effects of in vitro storage of turkey sperm at 4°C. | ||
| کلیدواژهها [English] | ||
| Turkey, Medium, Sperm, Soy lecithin, Egg yolk | ||
| مراجع | ||
RERERENCESAires, V. A., Hinsch, K. D., Mueller-Schloesser, F., Bogner, K., Mueller-Schloesser, S., & Hinsch, E. (2003). In vitro and in vivo comparison of egg yolk-based and soybean lecithin-based extenders for cryopreservation of bovine semen. Theriogenology, 60(2), 269-279. Bailey, J. L., Bilodeau, J. F., & Cormier, N. A. T. H. A. L. Y. (2000). Semen cryopreservation in domestic animals: a damaging and capacitating phenomenon. Journal of andrology, 21(1), 1-7. Bucak, M. N., Ateşşahin, A., Varışlı, Ö., Yüce, A., Tekin, N., & Akçay, A. (2007). The influence of trehalose, taurine, cysteamine and hyaluronan on ram semen: microscopic and oxidative stress parameters after freeze–thawing process. Theriogenology, 67(5), 1060-1067. De Leeuw, F. E., De Leeuw, A. M., Den Daas, J. H. G., Colenbrander, B., & Verkleij, A. J. (1993). Effects of various cryoprotective agents and membrane-stabilizing compounds on bull sperm membrane integrity after cooling and freezing. Cryobiology, 30(1), 32-44. Gil, J., Januskauskas, A., Håård, M., Håård, M. G. M., Johanisson, A., Söderquist, L., & Rodriguez‐Mártinez, H. (2000). Functional sperm parameters and fertility of bull semen extended in Biociphos‐Plus® and Triladyl®. Reproduction in Domestic Animals, 35(2), 69-77. Iaffaldano, N., Manchisi, A., & Rosato, M. P. (2008). The preservability of turkey semen quality during liquid storage in relation to strain and age of males. Animal reproduction science, 109(1-4), 266-273. Imani, S., Zhandi, M., Towhidi, A., Zaghari, M., Yousefi, A. R., Sharafi, M., & Nadri, T. (2023). Determining the Optimal Dosage of Lecithin Nanoliposome in Rooster Semen Freezing Medium and Fertility Potential. Biopreservation and Biobanking, 21(2), 191-199. Kamar, G. A. (1960). The influence of semen characteristics on hatching results of chicken eggs. Poultry Science, 39(1), 188-192. Lachaud, C., Tesarik, J., Cañadas, M. L., & Mendoza, C. (2004). Apoptosis and necrosis in human ejaculated spermatozoa. Human reproduction, 19(3), 607-610. Long, J. A. (2006). Avian semen cryopreservation: what are the biological challenges?. Poultry science, 85(2), 232-236. Nadri, T., Towhidi, A., Zeinoaldini, S., Martínez-Pastor, F., Mousavi, M., Noei, R., ... & Sangcheshmeh, A. M. (2019). Lecithin nanoparticles enhance the cryosurvival of caprine sperm. Theriogenology, 133, 38-44. Nadri, T., Towhidi, A., Zeinoaldini, S., Riazi, G., Sharafi, M., Zhandi, M., ... & Gholami, D. (2022). Supplementation of freezing medium with encapsulated or free glutathione during cryopreservation of bull sperm. Reproduction in Domestic Animals, 57(5), 515-523. Najafi, A., Zhandi, M., Towhidi, A., Sharafi, M., Sharif, A. A., Motlagh, M. K., & Martinez-Pastor, F. (2013). Trehalose and glycerol have a dose-dependent synergistic effect on the post-thawing quality of ram semen cryopreserved in a soybean lecithin-based extender. Cryobiology, 66(3), 275-282. Nestor, K. E. (1984). Genetics of growth and reproduction in the turkey: 9. Long-term selection for increased 16-week body weight. Poultry Science, 63(11), 2114-2122. Ostadian, C., Mehrafza, M., Eftekhari, A., Aghajani, S., Vahabzadeh, H., Gholami, M., ... & Hosseini, A. (2022). The effect of prolonged incubation of sperm at testis temperature versus room temperature on semen parameters-an experimental study. Journal of Obstetrics, Gynecology and Cancer Research, 7(4), 323-328. Raheja, N., Choudhary, S., Grewal, S., Sharma, N., & Kumar, N. (2018). A review on semen extenders and additives used in cattle and buffalo bull semen preservation. J. Entomol. Zool. Stud, 6(3), 239-245. Quinn, P. J., Chow, P. Y. W., & White, I. G. (1980). Evidence that phospholipid protects ram spermatozoa from cold shock at a plasma membrane site. Reproduction, 60(2), 403-407. Zhang, L., Wang, Y., Sun, X., Kang, Y., Sohail, T., Wang, J., & Li, Y. (2023). Effects of Different Diluents on Semen Quality of Hu Ram Stored at 4° C. Animals, 13(18), 2823. Khalifa, E. I., & Abdel-Hafez, M. A. M. (2014). Effect of soybean lecithin-based semen extender on freezability and fertility of Rahmani ram spermatozoa. Egyptian Journal of Sheep and Goat Sciences, 9(1), 59-66. Salmani, H., Nabi, M. M., Vaseghi-Dodaran, H., Rahman, M. B., Mohammadi-Sangcheshmeh, A., Shakeri, M., ... & Zhandi, M. (2013). Effect of glutathione in soybean lecithin-based semen extender on goat semen quality after freeze-thawing. Small ruminant research, 112(1-3), 123-127. Schäfer, S., & Holzmann, A. (2000). The use of transmigration and Spermac™ stain to evaluate epididymal cat spermatozoa. Animal reproduction science, 59(3-4), 201-211. Zhandi, M., Ansari, M., Roknabadi, P., Zare Shahneh, A., & Sharafi, M. (2017). Orally administered Chrysin improves post‐thawed sperm quality and fertility of rooster. Reproduction in Domestic Animals, 52(6), 1004-1010. 23. Sexton, T. J., & Giesen, A. F. (1982). Beltsville poultry semen extender: 6. Holding turkey semen for six hours at 15 C. Poultry Science, 61(6), 1202-1208. Sexton, T. J., & Giesen, A. F. (1983). Beltsville poultry semen extender. 8. Factors affecting turkey semen held six hours at 15 C. Poultry Science, 62(6), 1063-1068. Slanina, T., Miskeje, M., Knízat, L., Mirda, J., & Massányi, P. (2012). The effect of different concentration of trehalose on turkey spermatozoa motility in vitro. The Journal of Microbiology, Biotechnology and Food Sciences, 1(4), 573. Słowińska, M., Liszewska, E., Dietrich, G. J., & Ciereszko, A. (2012). Characterization of proacrosin/acrosin system after liquid storage and cryopreservation of turkey semen (Meleagris gallopavo). Theriogenology, 78(5), 1065-1077. Tabatabaei Vakili, S., Aghaei, A., & Kazemizadeh, A. (2020). Effect of different concentrations of Lavandula angustifolia extract on semen quality of rooster during storage in liquid condition. Research On Animal Production, 11(27), 74-81. Mehdipour, M., Kia, H. D., Moghaddam, G., & Hamishehkar, H. (2018). Effect of egg yolk plasma and soybean lecithin on rooster frozen-thawed sperm quality and fertility. Theriogenology, 116, 89-94. | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 312 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 263 |
||