پیوندهای مفید
اخبار و اعلانات
آمار
| تعداد نشریات | 158 |
| تعداد شماره‌ها | 6,225 |
| تعداد مقالات | 67,685 |
| تعداد مشاهده مقاله | 114,970,307 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 89,641,922 |
مقایسۀ مقاومت چهار گونه بادام وحشی به تنش شوری در استان چهارمحال و بختیاری | ||
| نشریه محیط زیست طبیعی | ||
| مقاله 3، دوره 67، شماره 3، آبان 1393، صفحه 267-278 اصل مقاله (298.65 K) | ||
| نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/jne.2014.52726 | ||
| نویسندگان | ||
| حسن جهانبازی* 1؛ سید محمد حسینی نصر2؛ خسرو ثاقب طالبی3؛ سید محمد حجتی4 | ||
| 1استادیار، عضو هیئت علمی مرکز تحقیقات کشاورزی و منابع طبیعی استان چهارمحال و بختیاری | ||
| 2استادیار، عضو هیئت علمی دانشکدۀ منابع طبیعی دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری | ||
| 3دانشیار، عضو هیئت علمی مؤسسۀ تحقیقات جنگلها و مراتع کشور | ||
| 4استادیار، عضو هیئت علمی دانشکدۀ منابع طبیعی دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری. | ||
| چکیده | ||
| شوری و خشکی از تنشهای مهم محیطی هستند که آثار نامطلوبی بر زیستبومهای طبیعی دارند. در میان ژرم پلاسمهای طبیعی کشور، گونههایی وجود دارند که به شرایط سخت زیست‌محیطی مقاوم‌اند. شناسایی و معرفی این گونهها میتواند زمینۀ لازم برای بهرهگیری از آن‌ها در احیای زیستبومهای تخریب‌یافته و افزایش غنای گونهای و بهبود تنوع زیستی را فراهم کند. به‌منظور مقایسۀ میزان مقاومت چهار گونه بادام وحشی (Amugdalus Arabica, A. scoparia, A. haussknechtii, A. eleagnifolia ) در مواجهه با تنش شوری و همچنین بررسی اثر عامل رویشگاهی جهت جغرافیایی در میزان مقاومت در برابر این تنش، بذر این گونهها از دو جهت شمالی و جنوبی در رویشگاه کرهبس استان چهارمحال و بختیاری جمع‌آوری و پس از تیمار سرما‌ـ رطوبت، در گلخانه کشت شد. نهالهای تولیدی، پس از دو ماه، با استفاده از نمک کلرید‌سدیم (NaCl) و با پنج سطح شوری شامل شاهد، 25، 50، 75 و 100 میلیمول، با آزمایش فاکتوریل در قالب طرح کاملاً تصادفی و در سه تکرار آزمایش شدند. نتایج نشان داد که با افزایش شوری از میزان طول و رویش ارتفاعی نهالها کاسته شد بهطوریکه نهالهای شاهد رویش 14 سانتیمتر طی دورۀ آزمایش داشتند و میزان رویش در نهالهای تحت تنش 100 میلیمول به 9/8 سانتیمتر کاهش یافت، همچنین بیشترین مقادیر رویشی و زیتوده مربوط به نهالهای حاصل از جهت جنوبی بود. افزایش شوری موجب کاهش جذب پتاسیم، مس، روی، آهن و منگنز و افزایش جذب نیتروژن، کلسیم، منیزیم، سدیم و کلر و افزایش غلظت پرولین در اندام هوایی نهالها شد. میزان پرولین در نهالهای شاهد 39 میلیگرم بر گرم بود و با افزایش تنش بر مقدار آن افزوده شد تا در نهالهای تحت تنش 100 میلیمول نمک به 4/118 میلیگرم بر گرم رسید. از میان گونههای مطالعه‌شده A. arabica بیشترین مقادیر فاکتورهای رویشی، رنگیزههای گیاهی و جذب برخی عناصر ضروری را در مواجهه با تنش شوری در اختیار داشت و به نظر میرسد که مقاوم‌ترین گونه به تنش شوری باشد. | ||
| کلیدواژه‌ها | ||
| پرولین؛ زاگرس؛ عناصر غذایی؛ کلرید سدیم | ||
| عنوان مقاله [English] | ||
| Tolerance comparison of four wild almonds to salinity in Chaharmahal and Bakhtiari province | ||
| نویسندگان [English] | ||
| Hassan Jahanbazy1؛ Seyed Mohammad Hosseini Nasr2؛ Khosro Sagheb Talebi3؛ Seyed Mohammad Hojati4 | ||
| 1Assistant Professor., Research Center of Agricultural and Natural Resources of Chaharmahal and Bakhtiari Province, Shahrekord, I. R. Iran | ||
| 2Assistant Professor, Faculty of Natural Resources, Sari Universty of Agricultural Sciences and Natural Resources, Sari, I. R. Iran | ||
| 3Associate Professor, Research Institute of Forests and Rangelands, Tehran, I. R. Iran | ||
| 4Assistant Professor, Faculty of Natural Resources, Sari Universty of Agricultural Sciences and Natural Resources, Sari, I. R. Iran | ||
| چکیده [English] | ||
| Drought and salinity are the most important environmental stresses that are causing adverse effects on natural ecosystems. There are species among Iranian natural germplasm that are resistant to environmental harsh conditions. Restoring of degraded ecosystems, promoting of biodiversity and increasing of species richness will provide by identifying of these species. Almond species with broad ecological range have this capability. In order to compare the resistance of wild almond species to salinity stress and investigation on effect of aspect (geographical direction) on salinity resistant, seeds of Amugdalus Arabica, A. scoparia, A. haussknechtii and A. eleagnifolia were collected from north and south aspects from Karebas site in Chaharmahal and Bakhtiari province. Seeds were treated by cold-water stratification and then were planted in the nylon bags in green house. After two months, seedlings were experimented by using of sodium chloride with five levels of salinity (control, 25, 50, 75, 100 Mm), by factorial experiment in completely randomized design with three replications. Results showed that the maximum amount of growth and biomass belonged to seedlings from south aspect. Control seedlings were grown 14 cm during the experimental period and the growth rate of seedlings under 100 mmol reduced to 8.9 centimeters. By increasing of salinity, length and height increment of seedlings decreased. Increasing of salinity caused reduce in absorption of copper, zinc, iron, manganese and potassium and increase in uptake of magnesium, sodium, chlorine, nitrogen, calcium and proline concentration in the shoots of seedlings. Proline in control seedlings was 39 mg/g, by increasing of stress amount of proline received to 118.4 mg/g in seedlings under salt stress of 100 mmol. Among the studied species, A. arabica had highest levels of growth factors, pigments concentration and uptake of necessary elements in facing of salinity stress, which sounds to be the most resistant species to salinity. | ||
| کلیدواژه‌ها [English] | ||
| nuterients, Prolin, sodioum chloride, Zagross | ||
| مراجع | ||
|
1. -Ahankoub, M., 2013. Investigation on water crisis in the aquifer of Khanmirza plain. First national conference on water crisis. http://www.civilica.com/Paper-ncwc01- ncwc01_046.html
2. Amolkumar, U.S., Sharma, A.K., 2008. Signal transduction during cold stress in plants. Physiol. Mol. Biol. Plants 14: 69-79.
3. Arnon DI., 1949. Copper enzymes in isolated chloroplasts, polyphenoxidase in beta vulgaris. Plant Physiology, 24: 1-15.
4. Ayala-Astorga, G. L., Alcaraz-Melendez, L., 2010. Salinity effects on protein cotent, lipid proxidation, pigments and proline in paulownia imperialis (Siebold & Zuccarini) and paulownia fortunei (Seemann & Hemsley) grown in vitro. Electronic journal of biotechnology, 13(5), 1-15. 5. Banakar, M. H., Ranjbar, G. H., 2010. Evaluation of salt tolerance of pistachio cultivars at seedling stage. American-Eurasian J. Agric. & Environ. Sci., 9 (2), 115-120.
6. Baum, S.F., Tran, P.N., Silk, W.K., 2000. Effects of salinity on xylem structure and water use in growing leaves of sorghum. New Phytol., 146, 119-127.
7. Bernstein, N., Meiri, A., 2004. Root growth of Avocado is more sensitive to salinity than shoot growth. J. Amer. Soc. Hort. Sci, 129(2),188-192.
8. Cushman, J. C., 2001. Osmoregolation in plants: lmplications for agriculture. American zoologist, 41(4), 758-769. 9. Dejampour, J., Aliasgarzad, N., Zeinalabedini, M., Rohani niya, M., Majidi Hervan, E., 2012. Evaluation of salt tolerance in almond [Prunus dulcis (L.) Batsch] rootstocks. African Journal of Biotechnology Vol. 11(56), 11907-11912. 10. Denisov, V.P., 1988. Almond Genetic Resources in the USSR and their use in production and breeding. Acta Hort. 224, 299-306.
11. Dhanapackiam, S., Muhammad llyas, M. H., 2010. Effect of salinity on Chlorophyll and carbohydrate contents of Sesbania grandiflora seedlings. Indian journal of science and thecnology, 3(1), 64-66. 12. Dubey, R.S., 1997. Photosynthesis in plants under stressful conditions. In: Handbook of photosynthesis (Ed.: M. Pessarakli). Marcel Dekker, New York. Pp: 859-975.
13. Durán Zuazo, V. H., Martínez-Raya, A., Aguilar Ruiz, J. and Franco Tarifa, D., 2004. Impact of salinity on macro- and micronutrient uptake in mango (Mangifera indica L. cv. Osteen) with different rootstocks. Spanish Journal of Agricultural Research,2 (1), 121-133.
14. El Nour, M., Khalil, A. A. M., Abdelmajid, E., 2006. Effect of Salinity on Seed Germination Characteristics of Five Arid Zone Tree Specie. U. of K. J. Agric. Sci. 14(1), 23-31.
15. Emami, A., 1996. Methods of plant analysis. Soil and water research institute, 982:128 p. 16. Eskandari, S., Mozafari, V., 2012. Effect of soil copper and salinity on growth and chemical composition of two pistachio cultivars. J. Sci. & Technol. Agric. & Natur. Resour., Water and Soil Sci., Vol. 16, No. 60, 199-214.
17. Fox T. C., Guerinot M. L., 1998. Molecular biology ofcation transport in plants. Annual Review of Plant Physiology and Plant Molecular Biology, 49, 669-696.
18. Ghahreman, A., Attar, F., 1999. Biodiversity of Plant Species in Iran. Vol.1. Publication of Tehran University.
19. Gradziel, T.M., Martinez-Gَmez, P., Dicenta, F., Kester, D. E., 2001. The utilization of Prunus species for almond variety improvement. J. Amer. Pomol. Soc., 55, 100-108.
20. Greenway, H., Munns, H., 1980. Mechanisms of salt tolerance in nonhalophytes. Annu. Rev. Plant Physiol. 31, 149-190.
21. Gu, J., Weina, L., Akinnagbe, A., Wang, J., Jia, L., Yang, M., 2012. Effect of salt stress on genetic diversity of Robinia pseudoacacia seedlings. African Journal of Biotechnology, Vol. 11(8): 1838-1847.
22. Hardikar, S. A., Pandey, A. N., 2011. Growth, water status and nutrient accumulation of seedlings of Cassia fistula L. in response to soil salinity. Anales de Biologia, 33: 1-11.
23. Hussain, K., Khalid, A. M., Hayat,K., Farrukh, M., 2009. Effect of different levels of salinity on growth and ion contents of black seeds (Nigella sativa L.). Current Research Journal of Biological Sciences, 1(3): 135-138.
24. Kamal Uddin, M.. Shukor Juraimi1, A., Razi Ismail1, M., Alamgir Hossain, M.,Othman, R. and Abdul Rahim, A., 2011. Effect of salinity stress on nutrient uptake and chlorophyll content of tropical turfgrass species. Australian Journal of Crop Science, 5(6):620-629. 25. Karimi, E., Abdolzadeh, A., Sadeghipour, H. R., 2009. Increasing salt tolerance in Olive, Olea europaea L. plants by supplemental potassium nutrition involves changes in ion accumulation and anatomical attributes. International Journal of Plant Production ,3(4), 49-60.
26. Li, N., Chen, S., Zhou, X., Li, C., Shao, J., Wang,R., Fritz,E., Hu¨ttermann, A., Polle, A., 2008. Effect of NaCl on photosynthesis, salt accumulation and ion compartmentation in two mangrove species, Kandelia candel and Bruguiera gymnorhiza. Aquatic Botany, 88, 303–310.
27. Lyengar, E. R. R., Reddy, M. P., 1996. Photosynthesis in high salt tolerance plants. In: M. pesserkali, (ed.) Hand book of photosynthesis. Marshal Dekar, Baten rose, USA,pp:56-65. 28. Mademba, F., Boucherea, U. R., 2003. Proline accumulation in cultivated citrus and its relationship with salt tolerance. Journal of horticultural scince and biotechnology, 78(5), 617-623. 29. Najafian, S. H., Rahemi, M., Tavallai, V., 2008. Effect of salinity on tolerance of two bitter almond rootstocks. American Eurasian journal agricultural and environmental science, 3(2), 264-268.
30. Nasim, M., Qureshi, R. H., Aziz, T., Saqib, M., Nawaz, S., Sahi, S. T., Pervaiz, S., 2007. Screening trees for salinity tolerance: A case-study with ten Eucalyptus species. Pak. J. Agri. Sci., 44(3), 385-396.
31. Oraei1, M., Tabatabaei, S. J., Fallahi, E., Imani, A., 2009. The effects of salinity stress and rootstock on the growth, photosynthetic rate, nutrient and sodium concentrations of almond (Prunus dulcis Mill.). Journal of Horticultural Sciences, Vol. 23, No. 2, 131-140.
32. Paridaa, A.K., Das, A.B., 2005. Salt tolerance and salinity effects on plants: a review. Ecotoxicology and Environmental Safety. 60, 324-349.
33. Percival, G. C., 2005. Identification of foliar salt tolerance of woody perennials using chlorophyll fluorescence. Hort science, 40(6), 1892-1897.
34. Sadeghi, H., Khavarinejad, R., Fahimi, H., Falahian, F., Imanipour., 2008. The effect of Nacl salinity on growth and mineral uptake in Pinus eldarica M. Journal of Horticultural Science and Technology,8(3),199-212.
35. Sadeghi, H., 2011. Differential response to salinity in two Iranian barley (Hordeum vulgare L.) cultivars. Romanian agricultural research, 28, 57-64. 36. Sai kachout, S., Mansoura, A., Jaffel, K., Leclerc, J. C., Rejeb, M. N., Ouerchi, Z., 2009. The effect of salinity on the growth of the halophyte Atriplex hortensis (Chenopodiaceae). Applied ecology and environmental research, 7(4): 319-332.
37. Soleimani, A., Zamani, Z., Talaei, A. R., Naghavi, M. R., 2006. Molecular Characterization of Unknown Potentially Salt Tolerant Olive Genotypes Using RAPD Markers. Journal of Sciences, Islamic Republic of Iran 17(2): 107-112. 38. Sorkheh, K., Shiran, B., Rouhi, E., Asadi, H., Jahanbazi, H., Moradi, T. M., Gradziel., Martinez- Gomez ,P., 2009. Phenotypic diversity within native Iranian almond (Prunus spp.) species and their breeding potential. Genet. Resour. Crop Evol., 56, 947-961.
39. Suárez, N., Medina, E., 2008. Salinity effects on leaf ion composition and salt secretion rate in Avicennia germinans (L.) L.The official journal of the Brazilian Society of Plant Physiology, 20(2),131-140.
40. Tester, M., Davenport, R., 2003. Na tolerance and Na transport in higher plants. Annals of botany, 91(5), 503-527. 41. Troll, B. W., Lindsley, J., 1954. A photometric method for the determination of proline. The Journal of Biological Chemistry, 655-660.
43. Vijayan, K., 2009. Approaches for enhancing salt tolerance in mulberry (Morus L). Plant Omics Journal, 2(1), 41-59. | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 2,248 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 849 |
||