سامانه پشتیبانی خدمات اطلاعات

  اخبار و اعلانات

 آمار

تعداد نشریات161
تعداد شماره‌ها6,532
تعداد مقالات70,501
تعداد مشاهده مقاله124,093,087
تعداد دریافت فایل اصل مقاله97,197,414
محمد, نازآفرین, متین همایی, حسن, حسینی, سید علی. (1401). تأثیر تعاملی تمرین مقاومتی و مصرف بذر کدو بر سطوح عوامل بازدارنده (گلوتاتیون و ATP) و عوامل مخرب (سیتوکرم-C و مالون ‌دی‌آلدئید) در بافت ریۀ رت‌های مسموم‌شده با پراکسید هیدروژن. , 14(3), 65-79. doi: 10.22059/jsb.2022.343665.1534
نازآفرین محمد; حسن متین همایی; سید علی حسینی. "تأثیر تعاملی تمرین مقاومتی و مصرف بذر کدو بر سطوح عوامل بازدارنده (گلوتاتیون و ATP) و عوامل مخرب (سیتوکرم-C و مالون ‌دی‌آلدئید) در بافت ریۀ رت‌های مسموم‌شده با پراکسید هیدروژن". , 14, 3, 1401, 65-79. doi: 10.22059/jsb.2022.343665.1534
محمد, نازآفرین, متین همایی, حسن, حسینی, سید علی. (1401). 'تأثیر تعاملی تمرین مقاومتی و مصرف بذر کدو بر سطوح عوامل بازدارنده (گلوتاتیون و ATP) و عوامل مخرب (سیتوکرم-C و مالون ‌دی‌آلدئید) در بافت ریۀ رت‌های مسموم‌شده با پراکسید هیدروژن', , 14(3), pp. 65-79. doi: 10.22059/jsb.2022.343665.1534
محمد, نازآفرین, متین همایی, حسن, حسینی, سید علی. تأثیر تعاملی تمرین مقاومتی و مصرف بذر کدو بر سطوح عوامل بازدارنده (گلوتاتیون و ATP) و عوامل مخرب (سیتوکرم-C و مالون ‌دی‌آلدئید) در بافت ریۀ رت‌های مسموم‌شده با پراکسید هیدروژن. , 1401; 14(3): 65-79. doi: 10.22059/jsb.2022.343665.1534

تأثیر تعاملی تمرین مقاومتی و مصرف بذر کدو بر سطوح عوامل بازدارنده (گلوتاتیون و ATP) و عوامل مخرب (سیتوکرم-C و مالون ‌دی‌آلدئید) در بافت ریۀ رت‌های مسموم‌شده با پراکسید هیدروژن

نشریه علوم زیستی ورزشی
مقاله 5، دوره 14، شماره 3، آبان 1401، صفحه 65-79    اصل مقاله (805.96 K)
نوع مقاله: مقاله پژوهشی Released under CC BY-NC 4.0 license I Open Access I
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/jsb.2022.343665.1534
نویسندگان
نازآفرین محمد1؛ حسن متین همایی* 2؛ سید علی حسینی3
1گروه فیزیولوژی ورزشی، واحد تهران مرکز، دانشگاه آزاد اسلامی ، تهران، ایران.
2نویسنده مسؤول، گروه فیزیولوژی ورزشی، واحد تهران مرکز،دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران.
3گروه تربیت بدنی و علوم ورزشی، واحد مرودشت، دانشگاه آزاد اسلامی، مرودشت، ایران
چکیده
مقدمه: مسمومیت‌های ریوی و تولید گونه‌های واکنشی به نقص در تبادل گازهای تنفسی و آسیب به DNA منجر می‌شوند. بذر کدو با خواص آنتی‌اکسیدانی بسیار قدرتمند می‌تواند تولید ROS را کاهش دهد؛ بنابراین هدف از تحقیق حاضر، بررسی تأثیر تعاملی تمرین مقاومتی و مصرف بذر کدو بر سطوح عوامل بازدارندة گلوتاتیون و ATP و مخرب سیتوکرم-C و مالون ‌دی‌آلدئید در بافت ریة رت‌های مسموم‌شده با پراکسید هیدروژن است.
روش پژوهش: 42 سر موش صحرایی نر نژاد ویستار با وزن تقریبی ۵۰±۲۵۰ گرم انتخاب و به‌صورت تصادفی به 7 گروه 6 سری شامل 1. کنترل سالم، 2. کنترل مسموم، 3. تمرین مقاومتی، 4. بذر کدو 1 میلی‌گرم بر کیلوگرم، 5. بذر کدو 2 میلی‌گرم بر کیلوگرم، 6. تمرین مقاومتی+بذر کدو 1 میلی‌گرم بر کیلوگرم و 7. تمرین مقاومتی+بذر کدو 2 میلی‌گرم بر کیلوگرم تقسیم شدند. پروتکل تمرین مقاومتی شامل بالا رفتن از نردبان یک‌متری با دو سانتی‌متر فاصله بین هر دو پله و شیب 85 درجه بود. تجزیه‌وتحلیل داده‌ها با استفاده از آزمون‌های آماری تحلیل واریانس دوطرفه همراه با آزمون تعقیبی بونفرونی در نرم‌افزار SPSS در سطح معنا‌داری 05/0P≤ صورت گرفت.
یافته‌ها: تمرین مقاومتی همراه با مصرف بذر کدو  به ایجاد اثر معنا‌داری بر غلظت‌های ATP، سیتوکروم-C، GSH، MDA و PAB در بافت ریه منجرشد (001/0=P).
نتیجه‌گیری: تعامل انجام تمرین مقاومتی همراه با مصرف بذر کدو با افزایش عواملی مانند ATP و غلظت GSH و همچنین کاهش غلظت سیتوکروم-C، MDA و PAB می‌تواند ROS تولیدشده از مسمومیت‌هایی مانند H2O2 را در بافت ریه کاهش دهد.
کلیدواژه‌ها
بذر کدو؛ پراکسید هیدروژن؛ تمرین مقاومتی؛ سیتوکرم-C؛ مالون دی‌آلدئید
عنوان مقاله [English]
Interactive Effect of Resistance Training and Pumpkin Seed Consumption on the Levels of Inhibitory (Glutathione and ATP) and Destructive (Cytochrome-C and Malon di Aldehyde) Factors in Lung Tissue of Rats Poisoned With Hydrogen Peroxide
نویسندگان [English]
Nazafarin Mohammad1؛ Hasan Matinhomaee2؛ Seyed Ali Hoseini3
1Department of Sports Physiology, Central Tehran Branch, Islamic Azad University, Tehran, Iran.
2Corresponding Author, Department of Sports Physiology, Central Tehran Branch, Islamic Azad University, Tehran, Iran.
3Department of Sports Physiology, Marvdasht Branch, Islamic Azad University, Marvdasht, Iran.
چکیده [English]
Introduction: Pulmonary poisoning and the production of Reactive Oxygen Species (ROS) lead to impaired respiratory gas exchange and cause DNA damage. Pumpkin seeds with powerful antioxidant properties can reduce ROS production. Therefore, the present study aimed to investigate the interactive effect of resistance training and pumpkin seed consumption on the levels of inhibitory (Glutathione and ATP) and destructive (Cytochrome-C and Malondialdehyde) factors in lung tissue of rats poisoned with hydrogen peroxide.
Methods: forty-two male Wistar rats with an approximate weight of 250±50 kg were selected and randomly divided into seven groups (six rats in each group) including 1. Healthy Control, 2. Poisoned Control, 3. Resistance Training, 4. One mg/kg Pumpkin Seeds, 5. Two mg/kg Pumpkin Seeds, 6. Resistance Training + One mg/kg Pumpkin Seeds, and 7. Resistance Training + Two mg/kg Pumpkin Seeds. The resistance training protocol consisted of climbing a one-meter ladder with a 2-centimeter distance between each step and an 85-degree incline. Data were analyzed using two-way ANOVA and Bonferroni post hoc test in SPSS software at a significance level of α=0.05.
Results: Resistance training combined with the consumption of pumpkin seeds led to a significant effect on ATP, Cytochrome-C, GSH, MDA, and PAB concentrations in lung tissue (P=0.001).
Conclusion: The interaction of performing resistance training with pumpkin seed consumption can reduce the production of ROS via toxins such as H2O2 in lung tissue, by increasing factors such as ATP and GSH concentration as well as decreasing Cytochrome-C, MDA, and PAB concentrations.
کلیدواژه‌ها [English]
cytochrome-C, hydrogen Peroxide, halondialdehyde, pumpkin seed, resistance training
مراجع

1.Rogers LK, Cismowski MJ. Oxidative stress in the lung–the essential paradox. Current Opinion in Toxicology. 2018;7:37-43.

2.Srinivas US, Tan BW, Vellayappan BA, Jeyasekharan AD. ROS and the DNA damage response in cancer. Redox Biology. 2019;25:101084.

3.Ifeanyi OE. A review on free radicals and antioxidants. Int J Curr Res Med Sci. 2018;4(2):123-33.

4.Powers SK, Deminice R, Ozdemir M, Yoshihara T, Bomkamp MP, Hyatt H. Exercise-induced oxidative stress: Friend or foe? Journal of Sport and Health Science. 2020;9(5):415-25.

5.Phaniendra A, Jestadi DB, Periyasamy L. Free radicals: properties, sources, targets, and their implication in various diseases. Indian Journal of Clinical Biochemistry. 2015;30(1):11-26.

6.Shrivastava A, Aggarwal LM, Mishra SP, Khanna HD, Shahi UP, Pradhan S. Free radicals and antioxidants in normal versus cancerous cells—An overview. 2019.

7.Cui X, Gong J, Han H, He L, Teng Y, Tetley T, et al. Relationship between free and total malondialdehyde, a well-established marker of oxidative stress, in various types of human biospecimens. Journal of Thoracic Disease. 2018;10(5):3088.

8.Zhao F, Yao J, Tong Y, Su D, Xu Q, Ying Y, et al. H 2 O 2-replenishable and GSH-depletive ROS ‘bomb’for self-enhanced chemodynamic therapy. Materials Advances. 2022;3(2):1191-9.

9.Ghazizadeh H, Saberi-Karimian M, Aghasizadeh M, Sahebi R, Ghazavi H, Khedmatgozar H, et al. Pro-oxidant–antioxidant balance (PAB) as a prognostic index in assessing the cardiovascular risk factors: A narrative review. Obesity Medicine. 2020;19:100272.

10.Norouzi J, Khosravi A, Hooshmand Moghadam B, Gaeini AA. Evaluation of Oxidative Stress and DNA Damage Indicators Following A Long Period of Resistance Training in Sedentary Older Men. Journal of Payavard Salamat. 2021;15(1):98-106.

11.Ismaeel A, Holmes M, Papoutsi E, Panton L, Koutakis P. Resistance training, antioxidant status, and antioxidant supplementation. International Journal of Sport Nutrition and Exercise Metabolism. 2019;29(5):539-47.

12.Asghari S, Azarbayjani MA, Maghsoud P, Matin Homaee H. The effect of pumpkin seeds hydroalcoholic extract and endurance training on mitochondrial biogenesis markers and DNA damage in Ovarian tissue in rats toxicated by hydrogen peroxide. Razi Journal of Medical Sciences. 2020;27(10):93-104.

13.Shokohirad N, Bagherpour T, Nemati N, Hojati V. The Supplementation Role of Pumpkin Seed and Endurance Training on Oxidative Stress Syndrome of Fast-twitch Muscles in Male Rats Poisoned with Hydrogen Peroxide. Journal of Animal Biology. 2020;12(4):31-44.

14.Garcıa J, Martınez-Balların E, Robinson M, Allue J, Reiter R, Osuna C, et al. Protective effect of β-carbolines and other antioxidants on lipid peroxidation due to hydrogen peroxide in rat brain homogenates. Neuroscience Letters. 2000;294(1):1-4.

15.Asgary S, Moshtaghian SJ, Setorki M, Kazemi S, Rafieian-Kopaei M, Adelnia A, et al. Hypoglycaemic and hypolipidemic effects of pumpkin (Cucurbita pepo L.) on alloxan-induced diabetic rats. African Journal of Pharmacy and Pharmacology. 2011;5(23):2620-6.

16.Lee S, Farrar RP. Resistance training induces muscle-specific changes in muscle mass and function in rat. Journal of Exercise Physiology Online. 2003;6(2).

17.Merry TL, Ristow M. Do antioxidant supplements interfere with skeletal muscle adaptation to exercise training? The Journal of Physiology. 2016;594(18):5135-47.

18.Mohazzab M, Matinhomaee H, Hosseini SA, Rahmati Ahmad Abad S. The Effect of Eight Weeks of Increasing Aerobic Training and Pumpkin Seed Supplementation on Oxidative Stress Indices of Lung Tissue in Rats Poisoned with Hydrogen Peroxide. Sport Physiology. 2022;14(53):202-177.

19.Datta S, Sinha B, Bhattacharjee S, Seal T. Nutritional composition, mineral content, antioxidant activity and quantitative estimation of water soluble vitamins and phenolics by RP-HPLC in some lesser used wild edible plants. Heliyon. 2019;5(3):e01431.

20.Seymen M, Uslu N, Türkmen Ö, Al Juhaimi F, Özcan MM. Chemical compositions and mineral contents of some hull-less pumpkin seed and oils. Journal of the American Oil Chemists' Society. 2016;93(8):1095-9.

21.Aghaei S, Nikzad H, Taghizadeh M, Tameh AA, Taherian A, Moravveji A. Protective effect of Pumpkin seed extract on sperm characteristics, biochemical parameters and epididymal histology in adult male rats treated with Cyclophosphamide. Andrologia. 2014;46(8):927-35.

22.Dotto J, Matemu AO, Ndakidemi PA. Nutrient composition and selected physicochemical properties of fifteen Mchare cooking bananas: A study conducted in northern Tanzania. Scientific African. 2019;6:e00150.

23.Wang Z, Zhao H, Qi H, Liu X, Liu Y. Free radical behaviours during methylene blue degradation in the Fe2+/H2O2 system. Environmental Technology. 2019;40(9):1138-45.

24.Birben E, Sahiner UM, Sackesen C, Erzurum S, Kalayci O. Oxidative stress and antioxidant defense. World Allergy Organization Journal. 2012;5(1):9-19.

25.Larosa V, Remacle C. Insights into the respiratory chain and oxidative stress. Bioscience Reports. 2018;38(5).

26.Douarre C, Sourbier C, Dalla Rosa I, Brata Das B, Redon CE, Zhang H, et al. Mitochondrial topoisomerase I is critical for mitochondrial integrity and cellular energy metabolism. PloS One. 2012;7(7):e41094.

27.Sas K, Robotka H, Toldi J, Vécsei L. Mitochondria, metabolic disturbances, oxidative stress and the kynurenine system, with focus on neurodegenerative disorders. Journal of the Neurological Sciences. 2007;257(1-2):221-39.

28.Badkoobeh Hezaveh M, Abedi B, Rahmati-Ahmadabad S. Effects of Aerobic Training and Pumpkin Seed Extract Consumption on the Heart and Aorta Oxidative Stress Biomarkers: A Case of Rats Exposed With Arsenic. Journal of Cardio-Thoracic Medicine. 2021;9(1):747-54.

29.Filippi A, Li C, Lelieveld S, Lucas K, Wang Y, Pöschl U, et al. H2O2 yield of atmospherically relevant quinones in surrogate lung fluid. Free Radical Biology and Medicine. 2018;120:S105.

30.Beigi Harchegani A, Tahmasbpour E, Borna H, Imamy A, Ghanei M, Shahriary A. Free radical production and oxidative stress in lung tissue of patients exposed to sulfur mustard: an overview of cellular and molecular mechanisms. Chemical Research in Toxicology. 2018;31(4):211-22.

31.Jin J, Xiong T, Hou X, Sun X, Liao J, Huang Z, et al. Role of Nrf2 activation and NF-κB inhibition in valproic acid induced hepatotoxicity and in diammonium glycyrrhizinate induced protection in mice. Food and Chemical Toxicology. 2014;73:95-104.

32.Zirrahian F, Bagherpoor T, Nemati N, Hojati V. Investigate the role of supplements of pumpkin seeds and exercise activity on oxidative stress factors. Ebnesina. 2020;22(2):36-43.

33.Powers SK, Smuder A, Judge A. Oxidative stress and disuse muscle atrophy: cause or consequence? Current Opinion in Clinical Nutrition and Metabolic Care. 2012;15(3):240.

34.Steinbacher P, Eckl P. Impact of oxidative stress on exercising skeletal muscle. Biomolecules. 2015;5(2):356-77.

35.Niki E. Oxidative stress and antioxidants: Distress or eustress? Free Radical Biology and Medicine. 2018;124:564.

36.Sindhi V, Gupta V, Sharma K, Bhatnagar S, Kumari R, Dhaka N. Potential applications of antioxidants–A review. Journal of Pharmacy Research. 2013;7(9):828-35.

آمار
تعداد مشاهده مقاله: 270
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 227


سامانه مدیریت نشریات علمی. قدرت گرفته از سیناوب