سامانه پشتیبانی خدمات اطلاعات

  اخبار و اعلانات

 آمار

تعداد نشریات158
تعداد شماره‌ها6,225
تعداد مقالات67,687
تعداد مشاهده مقاله115,002,167
تعداد دریافت فایل اصل مقاله89,680,918
عظیمی, سولماز, شاهین اینجار, سعیده, علیزاده, علیرضا. (1401). اثر برهمکنش بین گیاه باقلا و باکتری N179 Paenibacillus polymyxa بر شته سیاه باقلا. , 53(2), 283-294. doi: 10.22059/ijpps.2023.352631.1007014
سولماز عظیمی; سعیده شاهین اینجار; علیرضا علیزاده. "اثر برهمکنش بین گیاه باقلا و باکتری N179 Paenibacillus polymyxa بر شته سیاه باقلا". , 53, 2, 1401, 283-294. doi: 10.22059/ijpps.2023.352631.1007014
عظیمی, سولماز, شاهین اینجار, سعیده, علیزاده, علیرضا. (1401). 'اثر برهمکنش بین گیاه باقلا و باکتری N179 Paenibacillus polymyxa بر شته سیاه باقلا', , 53(2), pp. 283-294. doi: 10.22059/ijpps.2023.352631.1007014
عظیمی, سولماز, شاهین اینجار, سعیده, علیزاده, علیرضا. اثر برهمکنش بین گیاه باقلا و باکتری N179 Paenibacillus polymyxa بر شته سیاه باقلا. , 1401; 53(2): 283-294. doi: 10.22059/ijpps.2023.352631.1007014

اثر برهمکنش بین گیاه باقلا و باکتری N179 Paenibacillus polymyxa بر شته سیاه باقلا

دانش گیاهپزشکی ایران
مقاله 10، دوره 53، شماره 2، بهمن 1401، صفحه 283-294    اصل مقاله (537.58 K)
نوع مقاله: مقاله پژوهشی
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/ijpps.2023.352631.1007014
نویسندگان
سولماز عظیمی* 1؛ سعیده شاهین اینجار1؛ علیرضا علیزاده2
1گروه گیاهپزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه شهید مدنی آذربایجان، تبریز، ایران
2فارغ التحصیل دوره دکتری - گرایش قارچ شناسی و بیماری‌های قارچی گیاهان، گروه گیاهپزشکی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران،
چکیده
ایجاد مقاومت در گیاه علیه آفات از روش‌های جاگزین سموم شیمیایی است که می‌تواند جمعیت آفت را زیر سطح زیان اقتصادی نگه دارد. باکتری‌های همزیست خاک‌زی می‌توانند عوامل مفیدی در راستای افزایش مقاومت گیاهان در برابر حشرات گیاه‌خوار باشند. بر این اساس در این پژوهش تاثیر تیمار گیاه باقلا با باکتری Peanibacillus polymyxa N179 روی فراسنجه‌های جدول زندگی شته سیاه باقلا، Aphis fabae Scopoli (Hemiptera: Aphididae) مورد بررسی قرار گرفت. دو تیمار مورد بررسی در این پژوهش، شامل گیاه باقلا تیمار شده با باکتری و گیاه باقلا بدون تیمار باکتری به عنوان شاهد بود. گیاهان باقلای کاشته شده و جمعیت شته سیاه باقلا در شرایط دمایی 4±25 درجه‌ی سلسیوس، رطوبت نسبی 5±50% و دوره‌ی نوری 14 ساعت روشنایی و 10 ساعت تاریکی پرورش داده شدند. سپس سوسپانسیون باکتری Peanibacillus polymyxa ذکر شده به مقدار پنج میلی‌لیتر به وسیله سرنگ استریل، در خاک گلدان‌ها تزریق شد. بین تیمار باکتری و شاهد از نظر نرخ ذاتی افزایش جمعیت تفاوت معنی‌دار مشاهد شد (5/0≥P). به‌طوری که بیش‌ترین میزان این آماره روی تیمار شاهد (01/0± 42/0 در روز) و کم‌ترین آن روی تیمار باکتری P. polymyxa (001/0±23/0 در روز) مشاهده شد. با توجه به نتایج بدست آمده می‌توان اظهار داشت که گیاهان باقلای تیمار شده با باکتری می‌تواند جهت کاهش جمعیت شته سیاه باقلا موثر باشد.
کلیدواژه‌ها
باکتری؛ جدول زندگی؛ مقاومت گیاه؛ شته
عنوان مقاله [English]
Effect of interaction between faba beanand Paenibacillus polymyxa N179 on black bean aphid
نویسندگان [English]
solmaz azimi1؛ saedeh shahin injar1؛ Alireza Alizadeh2
1Department of Plant protection, Faculty of Agriculture, Azarbaijan Shahid Madani University, Tabriz, Iran.
2assistance professor of Plant protection, Azarbaijan Shahid Madani University, Tabriz, Iran
چکیده [English]
Plants resistance against pests is one of the methods of replacing chemical pesticide that can keep the pest population below the economic injury level. Soil symbiotic bacteria can be useful factors in increasing the resistance of plants against herbivorous insects. The two treatments investigated in this research included the bean plant treated with bacteria and the bean plant without bacteria treatment as a control. The Vicia faba L. and black bean aphid were grown in a growth chamber at 25±4 0C, %50±5 RH and a photopriod of 14L: 10D hours. Then, 5 ml of bacterial suspension was added into the soil of sown mugs with a sterile syringe. These experiments on the effect of two treatments on faba bean showed that different treatments have a significant differences effect on the biological properties of black bean aphid. The highest developmental time (19.78±0.20 days) and the lowest fertility rate were occurred on P. polymyxa. There were significant differences between different treatments in terms of inherent rate of population increase (P≤0.5). The highest rate was occurred in control treatment (0.42±0.01 day-1) and the lowest in combination P. polymyxa (0.23±0.001 day-1). The life expectancy of black bean aphids, which was grown on P. polymyxa treated, was significantly lower than control. According to the results, it can be stated that faba bean plant treated can be effective in reducing the population of the aphids of the bean.
کلیدواژه‌ها [English]
Aphid, Bacteria, Plant resistance, Life table
مراجع
    1. Adam, A. Makee, H. Idris, I. (2017). The influence of a non-pathogenic Pseudomonas putida strain BTP1 on reproduction and development of grape phylloxera. Advanced Hortical science, 26(2), 75–80.
    2. Anand, R. Grayston, S. Chanway, C. (2013). N2-fxation and seedling growth promotion
      of lodgepole pine by endophytic Paenibacillus polymyxa. Microbilogy Ecology, 66, 369–374.
    3. Arancon, N.Q. & Edwards, C.A. (2006). Suppression of insect pest population and damage to plants by vermicomposts. Bioresource Technology, 96, 1137–1142.
  • Carey, J.R. (1993). Applied demography for biologists with special emphasis on insects. Oxford university press, New York, USA.
  1. Chi, H. Liu, H. (1985). Two new methods for the study of insect population ecology. Bulletin of Institute of Zoology 24: 225–240.
  2. De Vleesschauwer, & D. Höfte, M. (2009). Rhizobacteria-induced systemic resistance. Advances in Botanical Research, Academic Press, 51, 223–281.
  3. De Vos, M. Van Oosten, V.R. Van Poecke, R.M.P. Van Pelt, J.A. Pozo, M.J. Mueller, M.J. Buchala, A.J. Métraux, J.P. Van Loon, L.C. Dicke, M. (2005). Signal signature and transcriptome changes of Arabidopsis during pathogen and insect attack. Molecular Plant-Microbe Interactions, 18, 923–937.
  4. Edreva, A. (2004). A novel strategy for plant protection: Induced resistance. Journal of Cell and Molecular Biology, 3, 61–69.
  5. Fahimi, A. Ashouri, A. Ahmadzadeh, M. Naveha, V.H. Asgharzadehb, A. Malekia, F. Feltonc, G.W. (2014). Effect of PGPR on population growth parameters of cotton aphid. Archives of Phytopathology and Plant Protection, 47(11), 1274–1285.
  6. Fallahzadeh-Mamaghani, V. Golchin, S. Shirzad, A. Mohammadi, H. Mohamadivand, F. (2021). Characterization of Paenibacillus polymixa N179 as a robust and multifunctional biocontrol agent. Biological control. 154, 1–9.
  7. Glick, B.R. (2014). Bacteria with ACC deaminase can promote plant growth and help to feed the world. Microbiological Research, 169, 30–39.
  8. Kasaei Faradonbeh, S. Hassanpou, M. Razmjou, J. Golizadeh, A. Esmaeilpour, B. (2015). Biological and population growth parameters of the melon aphid, Aphis gossypii Glover on cucumber plants grown at different vermicompost: soil ratios. Plant Pests Research, 4(4), 35–48. (In Persian).
  9. Kempster, VN. Scott, ES. Davies, KA. (2002). Evidence for systemic, cross-resistance in white clover (Trifolium repens) and annual medic (Medicago truncatula) induced by biological and chemical agents. Biocontrol Science of Technology, 12 (5), 615–623.
  10. Kessler, A. Baldwin, I.T. (2002). Plant responses to insect herbivory: the emerging molecular analysis. Annual Review of Plant Biology, 53, 299–328.
  11. Köllner, T.G. Held, M. Lenk, C. Hiltpold, I. Turlings, T.C. Gershenzon, J. (2008). A maize (E)-beta-caryophyllene synthase implicated in indirect defense responses against herbivores is not expressed in most American maize varieties. Plant Cell, 20, 482–494.
  12. Leeman, M. Ouden, F.M. Pelt, J.A. Cornelissen, C. Matamala-Garros, A. Bakker, P.A.H.M. Schippers, B. (1996). Suppression of fusarium wilt of radish by co-inoculation of fluorescent Pseudomonas spp. and root-colonizing fungi. European Journal of Plant Pathology, 102(1), 21–31.
  13. Legrand, A. & Barbosa, P. (2000). Pea aphid (Hom: Aphididae) fecundity, rate of increase and within plant distribution unaffected by plant morphology. Environmental Entomology, 29, 978–993.
  14. Ling, L. Zhao, Y. Sun, Sh. Zheng, D. Sun, X. Zeng, R. Chen, D. Song, Y. (2022). Enhanced anti-herbivore defense of tomato plants against Spodoptera litura by their rhizosphere bacteria. Plant Biology, 22, 254.
  15. Mohammadi Goraji, M. (2009). Effect of cucumber cultivar and vermicompost on melon aphid Aphis gossypii (Hem. Aphididae) in laboratory. MSc. thesis, University of Mohaghegh Ardabili (In Persian).
  16. Murphy, J.F. Zehnder G.W. Schuster, D.J. Sikora, E.J. Polston, E. Kloepper, J.W. (2000). Plant growth-promoting rhizobacterial mediated protection in tomato against Tomato mottle virus. Plant Diseases, 84 (7), 779–784.
  17. Pavlou, G. & Vakalounakis, D. (2005). Biological control of root and stem rot of greenhouse
    cucumber, caused by Fusarium oxysporum f. sp. radicis-cucumerinum, by lettuce
    soil amendment. Crop protection, 24, 135–140.
  18. Pineda, A. Zheng, S.J. Van Loon, J.J.A. Pieterse, C.M.J. Dicke, M. (2010). Helping plants to deal with insects: the role of beneficial soil-borne microbes. Trends in Plant Science, 15, 507 –514.
  19. Qingwen, h. Ping, L. Gang, W. Qingnian, C. (1998). On the biochemical mechanism of induced resistance of cotton to cotton bollworm by cutting off young seedling at plumular axis. Acta Phytophylacica Sinica, 25, 209–212.
  20. Ravi, A.V. Musthafa, K.S. Jegathammbal, G. Kathiresan, K. Pandian, S.K. (2007). Screening and evaluation of probiotics as a biocontrol agent against pathogenic Vibrios in marine aquaculture. Letters in Applied Microbiology, 45(2), 219–223.
  21. Razmjou, J. Vorburger, C. Mohammadi, M. Hassanpour, M. (2012). Influence of vermicompost and cucumber cultivar on population growth of Aphis gossypii Glover. Journal of Applied Entomology, 136(8), 561–640.
  22. Schmeltz, E.A. Alborn, H.T. Banchio, E. Tumlinson, J.H. (2013). Quantitaive relationships between induced jasmonic acid levels and volatile emission in Zea mays durhng Spodoptera exigua. Herbivory Planta, 216, 665–673.
  23. Serteyn, L. Quaghebeur, C. Ongena, M. Cabrera, N. Barrera, A. Montengro, M. Francic, M. Ramiraz, C. (2020). Induced Systemic Resistance by a Plant Growth-Promoting Rhizobacterium Impacts Development and Feeding Behavior of Aphids. Insects, 11(4), 234.
  24. Stout, M.J. Thaler, J.S. Thomma, B.P. (2006). Plant mediated interactions between pathogenic microorganisms and herbivorous arthropods. Annual Review of Entomology, 51, 663– 689.
  25. Van der Ent, S. Van Hulten, M. Pozo, M.J. Czechowski, T. Udvardi, M.K. Pieterse, C.M.J. Ton, J. (2009). Priming of plant innate immunity by rhizobacteria and beta-aminobutyric acid: differences and similarities in regulation. The New phytologist, 183(2), 419–431.
  26. Wheeler, G.S. Slansky, F. (1994). Effect of constitutive and herbivore-induced extractables from susceptible and resistance soybean foliage on non pest and pest noctuid caterpillar. Journal of Economic Entomology, 84, 1068–1079.
  27. Yegorenkova, I.V. Tregubova, K.V. Ignatov, V.V. (2013). "Paenibacillus polymyxa Rhizobacteria and their synthesized exoglycans in interaction with wheat roots: colonization and root hair deformation". Current Microbiology, 66 (5), 481–486.
  28. Zengguo, H. Kisla, D. Zhang, L. Yuan, C. Green-Church, K.B. Yousef, A.E. (2007). Isolation and Identification of a Paenibacillus polymyxa Strain That Coproduces a Novel Lantibiotic and Polymyxin. Applied and Environmental Microbiology, 73(1), 168–178.
  29. Zhong-xian, L. Xiao-ping, H. Heong, K.L. (2007). Effect of nitrogen fertilizer on herbivores and its stimulation to major insect pests in rice. Rice Science, 14(1), 56-66.
آمار
تعداد مشاهده مقاله: 128
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 142


سامانه مدیریت نشریات علمی. قدرت گرفته از سیناوب