سامانه پشتیبانی خدمات اطلاعات

  اخبار و اعلانات

 آمار

تعداد نشریات158
تعداد شماره‌ها6,240
تعداد مقالات67,871
تعداد مشاهده مقاله115,435,497
تعداد دریافت فایل اصل مقاله90,204,641
نبیان, صدیقه, طاهری, محمد, علیان, سارا, شه بخش, مهسا, گرامی صادقیان, عباس, اسدالهی, زهرا. (1402). ایجاد رده سلولی پایدار جهت تولید فسفولیپاز نوترکیب A2 زهر زنبورعسل (آپیس ملیفرا). , 79(1), 1-7. doi: 10.22059/jvr.2023.339344.3243
صدیقه نبیان; محمد طاهری; سارا علیان; مهسا شه بخش; عباس گرامی صادقیان; زهرا اسدالهی. "ایجاد رده سلولی پایدار جهت تولید فسفولیپاز نوترکیب A2 زهر زنبورعسل (آپیس ملیفرا)". , 79, 1, 1402, 1-7. doi: 10.22059/jvr.2023.339344.3243
نبیان, صدیقه, طاهری, محمد, علیان, سارا, شه بخش, مهسا, گرامی صادقیان, عباس, اسدالهی, زهرا. (1402). 'ایجاد رده سلولی پایدار جهت تولید فسفولیپاز نوترکیب A2 زهر زنبورعسل (آپیس ملیفرا)', , 79(1), pp. 1-7. doi: 10.22059/jvr.2023.339344.3243
نبیان, صدیقه, طاهری, محمد, علیان, سارا, شه بخش, مهسا, گرامی صادقیان, عباس, اسدالهی, زهرا. ایجاد رده سلولی پایدار جهت تولید فسفولیپاز نوترکیب A2 زهر زنبورعسل (آپیس ملیفرا). , 1402; 79(1): 1-7. doi: 10.22059/jvr.2023.339344.3243

ایجاد رده سلولی پایدار جهت تولید فسفولیپاز نوترکیب A2 زهر زنبورعسل (آپیس ملیفرا)

مجله تحقیقات دامپزشکی (Journal of Veterinary Research)
دوره 79، شماره 1، اسفند 1402، صفحه 1-7    اصل مقاله (904.33 K)
نوع مقاله: انگل شناسی و بیماری های انگلی
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/jvr.2023.339344.3243
نویسندگان
صدیقه نبیان* 1؛ محمد طاهری2؛ سارا علیان3؛ مهسا شه بخش3؛ عباس گرامی صادقیان1؛ زهرا اسدالهی3
1گروه زنبورعسل، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه تهران، تهران، ایران
2آزمایشگاه مرکزی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه تهران، تهران، ایران
3دانش آموخته دانشکده دامپزشکی، دانشگاه تهران، تهران، ایران
چکیده
زمینه مطالعه: زهر زنبور عسل دارای ترکیبات پیچیده‌ای مانند پلی‌پپتیدها، آنزیم‌ها و آمین‌ها می‌باشد. از اجزای مهم زهر زنبور عسل، آنزیم فسفولیپازA2  است که به‌‌عنوان یک آلرژن مهم زهر زنبور عسل مطرح می‌باشد و در درمان برخی از بیماری‌ها کاربرد دارد. این آنزیم در حشرات دیگر، آراکنیدها، مارها و سلول‌های پستانداران یافت می‌شود و عملکرد آن هیدرولیز پیوند استری دوم گلیسروفسفولیپیدها و آزاد شدن اسیدهای چرب و لیزوفسفولیپیدها می‌باشد. پروتئین‌های نوترکیب توسط ترانسفکشن موقت قابل‌‌تولید می‌باشند، اما جهت تولید در مقیاس بالا با صرفه اقتصادی، سلول‌های پایدار مناسب‌ترند.
هدف: مطالعه حاضر باهدف ایجاد رده سلولی پایدار جهت تولید فسفولیپاز نوترکیب A2 زهر زنبورعسل (آپیس ملیفرا) انجام شد.
روش‎کار: وکتور PCDNA حاوی ژن فسفولیپاز  A2از کمپانی ماکروژن تهیه شد. پلاسمید نوترکیب با روش شوک حرارتی به سلول‌های CHO منتقل شد و بیان ژن در محیط کشت HamsF12 حاوی آنتی‌بیوتیک نئومایسین صورت گرفت. پس از ازدیاد رده‌های پلی‌کلونال حاوی پلاسمید، کلون‌های مونوکلونال توسط روش رقت محدود  (limiting dilution)انتخاب شدند. سپس اقدام به تکثیر کلون‌های مونوکلونال، جمع‌آوری و تغلیظ سوپ سلول‌های انتخاب‌‌شده گردید و با انجام آزمایش SDS-PAGE بیان پروتئین مذکور ارزیابی شد.
نتایج: نتایج الکتروفورز که جهت تأیید بیان ژن فسفولیپازA2  در سوپ سلول‌ها انجام شد یک باند با وزن مولکولی 20 کیلودالتون را نشان داد که مؤید ایجاد رده سلولی پایدار جهت تولید فسفولیپاز A2 نوترکیب زهر زنبور عسل است.
نتیجه­گیری نهایی: پس از ترانسفکشن موقت پلاسمید حاوی این ژن، تعدادی از سلول‌های حاوی پلاسمید به‌واسطه داشتن سازوکارهای ترمیمی دچار نوترکیبی شدند و ژن مورد‌نظر همراه با ژن مقاومت به آنتی‌بیوتیک را در ژنوم خود قرار دادند که با اضافه‌ کردن آنتی‌بیوتیک به محیط کشت می‌توان این سلول‌ها را انتخاب کرد و سپس به بسط و تکثیر آن‌ها پرداخت.
کلیدواژه‌ها
رده سلولی پایدار؛ رده سلولی CHO؛ زهر زنبورعسل؛ فسفولیپاز A2؛ وکتور PCDNA
عنوان مقاله [English]
Generating Stable Cell Line for Producing Recombinant Phospholipase A2 of Honey Bee (Apis mellifera)
نویسندگان [English]
Sedigheh Nabian1؛ Mohammad Taheri2؛ Sara Alian3؛ Mahsa Shahbakhsh3؛ Abbas Gerami Sadeghian1؛ Zahra Asadollahi3
1Department of Honey Bee, Faculty of Veterinary Medicine, University of Tehran, Tehran, Iran
2Rastegar Central Research Laboratory, Faculty of Veterinary Medicine, University of Tehran, Tehran, Iran
3Graduated from the Faculty of Veterinary Medicine, University of Tehran, Tehran, Iran
چکیده [English]
BACKGROUND Honey bee venom contains complex compounds such as polypeptides, enzymes, and amines. One of the important components of bee venom is the phospholipase A2 enzyme, which is considered an important honey bee venom allergen and is also used to treat some diseases. This enzyme is found in other insects, arachnids, snakes, and mammalian cells, and its function is the hydrolysis of the second ester bond of glycerophospholipids and the release of fatty acids and lysophospholipids. Although transient transfection can produce recombinant proteins, stable cells are more suitable for high-scale production with economic efficiency.
OBJECTIVES: The present study created a stable cell line to produce recombinant phospholipase A2 from honey bee (Apis mellifera) venom.
METHODS: Plasmid cloning DNA vector containing phospholipase A2 gene was prepared by Macrogen Company. The recombinant plasmid was transferred to Chinese hamster ovary cells by heat shock method, and gene expression was carried out in a HamsF12 culture medium containing neomycin antibiotic. After increasing polyclonal strains containing plasmid, monoclonal clones were selected by limiting dilution. Then, monoclonal clones were propagated, the soup of the selected cells was collected and concentrated, and the protein expression was checked by sodium dodecyl-sulfate polyacrylamide gel electrophoresis test.
RESULTS: The results of electrophoresis, which was performed to confirm the expression of the phospholipase A2 gene in the cell soup, showed a band with a molecular weight of 20 kilodaltons, which confirms the creation of a stable cell line for the production of recombinant phospholipase A2 honey bee venom.
CONCLUSIONS: After the transient transfection of the plasmid containing this gene, several cells undergo recombination due to having repair mechanisms and putting the desired gene along with the antibiotic resistance gene in their genome. These cells can be selected and propagated by adding antibiotics to the culture medium.
کلیدواژه‌ها [English]
CHO cell line, Honey bee venom, PCDNA, Phospholipase A2, Stable cell line
اصل مقاله

مقدمه

رده‌های سلولی پایدار، سلول‌های نامیرایی می‌باشند که به‌‌صورت ثابت و پیوسته ژن مورد‌نظر را بیان می‌کنند. این سلول‌ها جهت تولید پروتئین‌های نوترکیب برای اهداف درمانی و تحقیقاتی، ژن‌درمانی و تولید حیوانات تراریخت‌‌شده (Transgenic) کاربرد وسیعی دارند. پروتئین‌های نوترکیب توسط ترانسفکشن موقت قابل‌تولید می‌باشند، اما جهت تولید در مقیاس بالا و با صرفه اقتصادی، سلول‌های پایدار مناسب‌ترند (1). برای این منظور سلول‌های (Chinese Hamster Ovary) CHO با پلاسمید حاوی ژن مورد‌نظر ترانسفکت می‌شوند، سپس پلاسمید به‌‌صورت اتفاقی در ژنوم میزبان توسط سازوکارهای سلولی جاسازی(integration)  می‌‌شود (2). همچنین می‌توان ژن‌هایی را که جاسازی شده‌اند توسط سیستم دی‌هیدرو‌فولات‌ردوکتاز تکثیر کرد، به‌‌طوری‌که تعداد ژن مورد‌نظر در هر سلول تا 1000 برابر قابل‌افزایش می‌باشد. این فرایند، در صنعت داروسازی کاربرد فراوانی دارد (3). زهر زنبور عسل دارای ترکیبات پیچیده‌ای مانند پلی‌پپتیدها، آنزیم‌ها، آمین‌ها می‌باشد که برخی از آن‌ها دارای خواص ضد‌التهابی و برخی از آن‌ها دارای خواص سمی و آلرژن می‌باشند. بنابراین شناسایی عملکرد مفید و مضر آن‌ها می‌تواند جهت شناخت بیشتر مکانیسم‌های التهابی مفید واقع شود (3، 4).

فسفولیپاز A2 یکی از ترکیبات مهم زهر زنبور عسل است که به‌‌عنوان یک آلرژن عمده مطرح می‌باشد (5). این آنزیم در حشرات دیگر، آراکنیدها، مارها و سلول‌های پستانداران یافت می‌شود و عملکرد آن هیدرولیز پیوند استری دوم گلیسروفسفولیپیدها و آزاد شدن اسیدهای چرب و لیزوفسفولیپیدها می‌باشد. همچنین سبب آزادسازی آراشیدونیک‌اسید و تولید ایکوزانوئیدها در سلول می‌شود که از واسطه‌های التهابی قوی می‌باشند (6). بنابراین با‌توجه‌به کاربردهای کلینیکی فراوان فسفولیپاز A2، کسب اطلاعات بیشتر در‌مورد آن می‌تواند کاربردهای درمانی و دارویی داشته باشد. در این راستا، تهیه رده سلولی پایدار به‌منظور تولید پروتئین نوترکیب فسفولیپاز A2 می‌تواند در جهت مطالعات دارویی مفید باشد.

مواد و روش کار

کشت سلول‌های CHO: سلول‌های CHO از مؤسسه پاستور ایران تهیه شدند. تعداد 105 سلول در میلی‌لیتر محیط کشت RPMI-1640 حاوی 10 درصد سرم جنین گاو، 100 واحد آنتی‌بیوتیک‌های پنی‌سیلین و 100 میلی‌گرم در میلی‌لیتر استرپتومایسین به‌مدت 72 ساعت در دمای 37 درجه سانتی‌گراد و 5 درصد Co2 کشت داده شدند.

تهیه وکتور حاوی ژن: در ابتدا توالی پروتئین فسفولیپاز A2 زهر زنبور با شماره دسترسی NP_001011614.1 از پایگاه داده NCBI به آدرس https://www.ncbi.nlm.nih.gov استخراج شد. وزن مولکولی و pH ایزوالکتریک آن با استفاده از سرور آنلاین expasy  به نشانی https://web.expasy.org/compute_pi محاسبه شد. سپس ترجمه معکوس پروتئین مذکور به DNA و بهینه‌سازی کدون‌ها جهت بیان مناسب در سلول‌های CHO با استفاده از سرور آنلاین JCAT به نشانی https://www.jcat.de صورت گرفت، سپس توالی مذکور جهت سنتز و کلون در پلاسمید  pcDNA (+3.1)‌به کمپانی بیوتک ارسال شد. پلاسمید  pcDNA (+3.1)حاوی پروموتور قوی جهت بیان مناسب در سلول‌های پستانداران و همچنین ژن مقاومت به نئومایسین به‌‌عنوان مارکر انتخابی است.

ترانسفکشن: ابتدا پلاسمید حاوی ژن مورد‌نظر، جهت تکثیر و ازدیاد با روش شوک حرارتی به باکتری اشرشیا کلای DH5α منتقل شد. سپس باکتری‌های ترانسفکت‌‌شده بر روی پلیت LB agar حاوی آمپی‌سیلین (100 میلی‌گرم بر میلی‌لیتر) کشت داده شدند. یک تک‌کلنی از محیط کشت مذکور برداشته شد و به محیط LB مایع حاوی آمپی‌سیلین (100 میلی‌گرم بر میلی‌لیتر) انتقال یافت و پس از گرمخانه‌گذاری به‌مدت یک شب در حرارت 37 درجه سانتی‌گراد، پلاسمید حاوی ژن مورد‌نظر با استفاده از کیت استخراج پلاسمید شرکت MBST استخراج شد. در مرحله بعد جهت ترانسفکشن سلول‌های یوکاریوتی CHO با پلاسمید حاوی ژن از روش کلسیم‌فسفات استفاده شد. به این صورت که 20-15 میکروگرم از  DNA‌با 124 میکرولیتر از کلرورکلسیم 2 مولار مخلوط و حجم آن به 1 سی‌سی رسانده شد و با 1 سی‌سی از محلول حاوی بافر HEPES 2 درصد مخلوط شد. سپس 1 سی‌سی از مخلوط مذکور بر روی سلول‌های CHO کشت داده شد و در یک فلاسک 25 میلی‌لیتری ریخته شد. پس از گذشت 16 ساعت، محلول رویی برداشته شد و 10 میلی‌لیتر از محیط کشت سلول تازه بر روی پلیت اضافه گردید.

انتخاب سلول‌های ترانسفکت‌‌شده در حضور آنتی‌بیوتیک نئومایسین: به‌منظور تعیین حداقل دُز مناسب آنتی‌بیوتیک که به کشتن سلول‌ها پس از حدود 10 روز منجر می‌شود، غلظت‌های مختلف نئومایسین به سلول‌های کشت داده‌‌شده در پلیت 24 خانه اضافه شد. محیط حاوی آنتی‌بیوتیک با غلظت‌های مختلف 0-100-200-400-800-1600-2500-3000-3200-4500-6000 میکروگرم در میلی‌لیتر هر 3 روز یک‌بار به‌مدت 2 هفته تعویض شد. در این آزمایش حداقل دُز مناسب آنتی‌بیوتیک 3000 میکروگرم در میلی‌لیتر تعیین شد. بنابراین به فلاسک 25 میلی‌لیتری حاوی سلول‌های CHO ترانسفکت‌شده، نئومایسین با غلظت 3000 میکروگرم در میلی‌لیتر اضافه گردید. بعد از گذشت حدود 2 هفته سلول‌های زنده جمع‌آوری شدند و داخل گوده پلیت 6‌ خانه‌ای به‌عنوان جمعیت پلی‌کلونال کشت داده شدند. جهت ایجاد رده‌های منوکلونال از روش کشت با رقت محدود (limiting dilution) در پلیت 96 خانه استفاده شد، به‌طوری‌که در هر‌یک از خانه‌ها تنها یک سلول قرار داده شد و کلون‌های حاصل به‌‌عنوان رده‌های منوکلونال در نظر گرفته شدند.

غربالگری سلول‌های ترانسفکت‌شده: پس از رشد سلول‌ها در پلیت 96 خانه‌ای از روش SDS-PAGE و ارزیابی فعالیت آنزیمی جهت تأیید تولید آنزیم، استفاده شد. سپس کلون‌های تولیدکننده آنزیم تکثیر و فریز شدند تا در مواقع لزوم برای کشت در مقیاس وسیع، بتوان از آن‌ها استفاده کرد.

SDS-PAGE بر‌اساس روشLaemli ، توسط دستگاه الکتروفورز عمودی (Biorad) انجام شد (7). جهت جدا کردن باند‌های پروتئینی، از ژل متراکم‌کننده 5 درصد و ژل جداکننده 12 درصد استفاده شد.

به ‌منظور آماده‌سازی نمونه، 20 میکرولیتر از لیزات سلول در بافر لیزات (20 میلی‌مولار تریس با pH=8، 2 میلی‌‍‌‌مولار EDTA، 5/0 درصد ترایتون 100 و 5/0 درصد SDS) با 20 میکرولیتر بافر نمونه SDS-PAGE مخلوط شد و پس از گذشت 5 دقیقه، 12 میکرولیتر آن در گوده مربوطه ریخته شد و برای تعیین وزن مولکولی باندها از مارکر پروتئینی استفاده گردید. سپس ولتاژ دستگاه روی 80 ولت تنظیم شد و تا زمان باز شدن کامل مارکر، عمل الکتروفورز ادامه یافت. پروتئین‌ها بر‌اساس وزن مولکولی خود روی ژل حرکت کردند. پس از اتمام الکتروفورز، ژل از دستگاه خارج و با استفاده از رنگ کوماسی‌بلو رنگ‌آمیزی شد و سپس ژل از محلول رنگ خارج گردید و در محلول رنگ‌بر قرار داده شد، تا باندهای پروتئینی مشخص شوند.

سنجش فعالیت آنزیم فسفولیپاز A2: اندازه‌گیری فعالیت فسفولیپاز A2 با استفاده از روش Owen انجام شد. برای انجام این کار ابتدا یک زرده تخم‌مرغ در 200 میلی‌لیتر آب مقطر دیونیزه حل شد. سپس 10 میلی‌لیتر از آن با 2 میلی‌لیتر از کلرور‌کلسیم 3 میلی‌مول در لیتر مخلوط گردید و متعاقباً 2 میلی‌لیتر از محلول 5 درصد آلبومین سرم گاو، 2 میلی‌لیتر از محلول 13 میلی‌مول در لیتر سدیم‌داکسی‌کولات و 4 میلی‌لیتر آب مقطر به آن اضافه و  pHمخلوط مذکور با اضافه کردن هیدروکسید‌سدیم بر روی عدد 8 تنظیم شد. سپس به‌‌منظور تأیید ترانسفکت شدن، فعالیت آنزیمی با اضافه کردن 1 میلی‌لیتر از محلول رویی سلول‌های CHO ترانسفکت‌شده به مخلوط مذکور و انکوباسیون به‌مدت نیم‌ساعت در حرارت آزمایشگاه و بررسی مقدار کاهش pH که به‌‌واسطه آزادسازی اسیدهای چرب صورت می‌گیرد، اندازه‌گیری شد و به‌طور هم‌زمان از نمونه کنترل فاقد پلاسمید حاوی ژن فسفولیپاز A2 جهت تأیید روش فوق استفاده گردید.

نتایج

توالی پروتئینی فسفولیپازA2  حاصل از پایگاه اطلاعات داده NCBI به شرح ذیل بود. همچنین وزن مولکولی پروتئین مذکور توسط سرور آنلاین expasy حدود 17 کیلو‌دالتون و نقطه ایزوالکتریک آن 21/6 محاسبه شد.

MQVVLGSLFLLLLSTSHGWQIRDRIGDNELEERIIYPGTLWCGHGNKSSGPNELGRFKHTDACCRTHDMCPDVMSAGESKHGLTNTASHTRLSCDCDDKFYDCLKNSADTISSYFVGKMYFNLIDTKCYKLEHPVTGCGERTEGRCLHYTVDKSKPKVYQWFDLRKY

تأیید ترانسفکشن از‌طریق بررسی رشد سلول‌ها در حضور آنتی‌بیوتیک نئومایسین انجام شد، به‌طوری‌که سلول‌های حاوی پلاسمید به‌دلیل دارا بودن نئومایسین‌فسفوترانسفراز در محیط حاوی 3000 میکرو‌گرم نئومایسین رشد کردند (تصویر 1).

چنان‌که در تصویر 2 نشان داده شده است، حداقل غلظت آنتی‌بیوتیک که مانع رشد سلول‌های ترانسفکت‌نشده شد 3000 میکروگرم در میلی‌لیتر تعیین شد. در آزمایش SDS-PAGE باندهای متعدد حاصل شد که محدوده وزن مولکولی آن حدود 19-16 کیلودالتون بود و این می‌تواند مربوط به ایزوفرم‌های مختلف فسفولیپازA2  باشد (تصویر 3).

سنجش فعالیت آنزیمی فسفولیپاز :A2 در آزمون سنجش فعالیت آنزیمی فسفولیپاز A2،pH  محلول حاوی زرده تخم‌مرغ از 8 به عدد 7 تقلیل یافت، در‌حالی‌که چنین تغییری در نمونه کنترل که فاقد پلاسمید حاوی ژن بود مشاهده نشد.

بحث

زهر زنبور عسل می‌تواند سبب ایجاد واکنش‌های آنافیلاکتیک وابسته به IgE در افراد شود. بنابراین تشخیص حساسیت به زهر زنبور عسل با استفاده از اجزای زهر زنبور یک روش مناسب و ضروری است. تولید فسفولیپازA2  نوترکیب به‌‌عنوان یکی از آلرژن‌های زهر زنبور عسل می‌تواند جهت استفاده از روش‌های تشخیصی مانند الایزا، با استفاده از سرم بیماران دچار آلرژی مفید واقع شود. همچنین فسفولیپازA2  نوترکیب از زهر زنبور عسل می‌تواند به شناخت مکانیسم‌های مولکولی آلرژی به زهر زنبور عسل کمک کند و به‌‌عنوان یک ابزاردرمانی استفاده شود. از خاصیت ضد‌التهابی زهر زنبور عسل در درمان بیماری‌های خودایمن، مثل آرتریت روماتوئید و مالتیپل‌اسکلروزیس استفاده می‌شود. فسفولیپاز A2 دارای خواص تعدیل‌کننده ایمنی است و در بیماری‌های متنوعی مانند آسم و پارکینسون دارای اثرات درمانی می‌باشد (8-11). این ترکیب در غلظت‌های بالا می‌تواند سبب آسیب به غشای سلول و در‌نتیجه القای نکروز سلولی و به دنبال آن اثرات مضر شود (12). بنابراین ارزیابی اثرات مضر و مفید فسفولیپازA2  در روند ایمونوتراپی و سایر مطالعات ضروری است. بدین منظور، جهت بیان مداوم ژن، تولید سل‌لاین‌های پایدار ضروری است. تهیه لاین‌های سلولی پایدار جهت تهیه پروتئین‌های نوترکیب دارویی، تحقیقاتی، تشخیصی و آنتی‌بادی‌های مونوکلونال در سطوح بالا بخش مهمی از مطالعات داروسازی را به خود اختصاص می‌دهد که به‌‌طور قابل‌‌ملاحظه‌ای سبب صرفه‌جویی در وقت و هزینه و سبب بیان ژن مورد‌نظر به‌طور مداوم و کنترل‌شده می‌شود. همچنین برخی از اپی‌توپ‌ها به‌‌واسطه تغییرات پس از ترجمه ایجاد می‌شوند. بنابراین بیان فسفولیپاز A2 در سلول‌های یوکاریوتی CHO ضروری است (13). در مطالعه حاضر توالی پروتئین فسفولیپازA2  که از NCBI استخراج شد حاوی 167 اسید‌آمینه بود که 18 اسید‌آمینه آن مربوط به پپتید راهنما (signal peptide) می‌باشد و همچنین توسط نرم‌افزار موجود در Expasy مقدار وزن مولکولی این آنزیم حدود 17 کیلودالتون محاسبه شد که در آزمایش SDS-PAGE نیز این نتیجه تأیید گردید و با مطالعه Shen و همکاران در سال 2010 نیز هم‌خوانی داشت. در مطالعات آن‌ها طیف 18-16 کیلودالتون برای این آنزیم ذکر شده بود که علت این تنوع وزن را ناشی از الگوهای قندی شدن glycolization)) متفاوت اعلام کردند. همچنین میزان بیان پایین این پروتئین می‌تواند ناشی از ماهیت سمی آن باشد که سبب ایجاد صدمه به سلول‌های CHO می‌‌شود که در مطالعه Shen و همکاران در سال 2010 نیز بیان شده است (14).

در مطالعه حاضر، به‌‌منظور تأیید فعالیت آنزیمی از محلول زرده تخم‌مرغ حاوی کلرور‌کلسیم استفاده شد و pH محلول حاوی زرده تخم‌مرغ از 8 به عدد 7 به‌واسطه ایجاد اسیدهای چرب آزاد تقلیل یافت که مؤید فعالیت آنزیم فوق است.

خانواده فسفولیپاز A2 در موجودات مختلف، گروهی از آنزیم‌های خارج‌سلولی را تشکیل می‌دهند که از‌نظر ساختمانی شبیه به هم و وابسته به کلسیم می‌باشند. هرکدام از این آنزیم‌ها از نقطه‌نظر سوبسترا و توزیع سلولی و بافتی با یکدیگر تفاوت‌هایی دارند که سبب تمایز نقش بیولوژیک آن‌ها می‌‌شوند. برای مثال در پستانداران آنزیم‌های فسفولیپازA2  گروه 3، همولوگ فسفولیپاز A2 زهر زنبور عسل می‌باشند که در بلوغ اسپرم و ایجاد آرترواسکلروزیس نقش ایفا می‌کنند (14).

فسفولیپاز A2 زهر زنبور عسل دارای خواص مفید و اثرات مضر می‌باشد. از خواص مفید آن می‌توان به خاصیت ضد‌التهابی در درمان بیماری‌های اتوایمیون اشاره کرد که می‌تواند به‌دلیل افزایش تولید لنفوسیت‌های T تنظیمی (Regulatory‌T-cell) و افزایش اینترلوکین 10 از سلول‌های عرضه‌کننده آنتی‌ژن باشد و در شرایط آلرژی می‌تواند سبب کاهش فعالیت‌های لنفوسیت‌های Th2 و متعاقباً جلوگیری از تولید IgE اختصاصی شود (15). همچنین فسفولیپاز A2 زهر زنبور عسل دارای اثرات ضد‌توموری با مکانیسم ایجاد صدمه به غشای سلول‌های سرطانی می‌باشد و با ایجاد پیام‌برهای ثانویه (Secondary messenger) و تداخل در انتقال سیگنال سبب تعدیل تکثیر سلولی و تنظیم چرخه سلولی می‌شود (16، 17). از اثرات مضر فسفولیپاز زهر زنبور عسل می‌توان به خاصیت نوروتوکسیک آن اشاره کرد، چنان‌که محققین نشان داده‌اند تزریق مستقیم این آنزیم به داخل سیستم عصبی مرکزی رت در یک رویه وابسته به دُز می‌تواند سبب دمیلونیزاسیون شود (9).

نتیجه‌گیری نهایی: فسفولیپاز A2 زهر زنبور عسل دارای خواص مفید و اثرات مضر می‌باشد. خواص مفید آن، از‌جمله خاصیت ضدالتهابی فسفولیپاز A2 زهر زنبور عسل در درمان بیماری‌های اتوایمیون، مانند آرتریت روماتوئید و مالتیپل‌اسکلروزیس، همچنین اثرات ضدتوموری آن در کنار خواص مضر توکسیک و آلرژیک آن، اهمیت مطالعات تشخیصی و درمانی در‌رابطه‌با این آنزیم را مشخص می‌کند. بنابراین تولید پروتئین نوترکیب آن توسط رده‌های سلولی پایدار، به‌‌صورت کنترل‌‌شده و مداوم و با صرف کمترین وقت و هزینه می‌تواند مفید واقع شود. در مطالعه حاضر پس از ترانسفکشن موقت پلاسمید حاوی این ژن، تعدادی از سلول‌های حاوی پلاسمید به‌دلیل داشتن سازوکارهای ترمیمی دچار نوترکیبی شدند و ژن مورد‌نظر همراه با ژن مقاومت به آنتی‌بیوتیک در ژنوم سلول‌ها قرار گرفت که با اضافه کردن آنتی‌بیوتیک به محیط کشت، می‌توان این سلول‌ها را انتخاب کرد و سپس به تکثیر آن‌ها پرداخت.

سپاسگزاری

نویسندگان این مقاله از معاونت پژوهشی دانشکده دامپزشکی دانشگاه تهران جهت حمایت مالی از مطالعه حاضر تشکر و قدردانی می‌کنند.

تعارض منافع

بین نویسندگان تعارض در منافع گزارش نشده است.

مراجع
  1. Lagassé HD, Alexaki A, Simhadri VL, Katagiri NH, Jankowski W, Sauna ZE, et al. Recent advances in (therapeutic protein) drug development. F1000Res. 2017;6:1-18. doi: 10.12688/f1000research.9970.1
  2. Albert B, Innes J, Blackford J, Taylor B, Conneller C, Milner N. Degradation of the wetland sediment archive at Star Carr: An assessment of current palynological preservation. J Archaeol Sci Rep. 2016;6:488-95. doi: 10.1016/j.jasrep.2016.03.010
  3. Oršolić N. Bee venom in cancer therapy. Cancer Metastasis Rev. 2012;31(1):173-94. doi: 10.1007/s10555-011-9339-3
  4. Wehbe R, Frangieh J, Rima M, El Obeid D, Sabatier J-M, Fajloun Z. Bee venom: Overview of main compounds and bioactivities for therapeutic interests. Molecules. 2019;24(16):2997. doi: 10.3390/molecules24162997
  5. Perez-Riverol A, Lasa AM, dos Santos-Pinto JRA, Palma MS. Insect venom phospholipases A1 and A2: Roles in the envenoming process and allergy. Insect Biochem Mol Biol. 2019;105:10-24. doi: 10.1016/j.ibmb.2018.12.011 PMID: 30582958
  6. Murakami M, Sato H, Miki Y, Yamamoto K, Taketomi Y. A new era of secreted phospholipase A2. J Lipid Res. 2015;56(7):1248-61. doi: 10.1194%2Fjlr.R058123
  7. Laemmli UK. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature. 1970;227(5259):680-5. doi: 10.1038/227680a0
  8. Darwish DA, Masoud HM, Abdel-Monsef MM, Helmy MS, Zidan HA, Ibrahim MA. Phospholipase A2 enzyme from the venom of Egyptian honey bee Apis mellifera lamarckii with anti-platelet aggregation and anti-coagulation activities. J Genet Eng Biotechnol. 2021;19(1):1-8. doi: 10.1186/s43141-020-00112-z PMID: 33443641
  9. Hwang D-S, Kim SK, Bae H. Therapeutic effects of bee venom on immunological and neurological diseases. Toxins. 2015;7(7):2413-21. doi: 10.3390/toxins7072413
  10. Mirshafiey A. Venom therapy in multiple sclerosis. Neuropharmacology. 2007;53(3):353-61. doi: 10.1016/j.neuropharm.2007.05.002
  11. Kim KH, Lee SY, Shin J, Hwang J-T, Jeon HN, Bae H. Dose-dependent neuroprotective effect of standardized bee venom phospholipase A2 against MPTP-induced parkinson’s disease in mice. Front Aging Neurosci. 2019;11(80):1-9. doi: 10.1016/j.immuni.2013.10.006
  12. Lee G, Bae H. Bee venom phospholipase A2: Yesterday’s enemy becomes today’s friend. Toxins. 2016;8(2):48. doi: 10.3390/toxins8020048
  13. Kuo C-C, Chiang AW, Shamie I, Samoudi M, Gutierrez JM, Lewis NE. The emerging role of systems biology for engineering protein production in CHO cells. Curr Opin Biotechnol. 2018;51:64-9. doi: 10.1016/j.copbio.2017.11.015 PMID: 29223005
  14. Shen L-r, Ding M-h, Zhang L-w, Zhang W-g, Liu L, Li D. Expression of a bee venom phospholipase A2 from Apis cerana cerana in the baculovirus-insect cell. J Zhejiang Uni Sci. B. 2010;11(5):342-9. doi: 10.1111/j.1744-7917.2004.tb00175.x
  15. Kim H, Lee H, Lee G, Jang H, Kim S-S, Yoon H, et al. Phospholipase A2 inhibits cisplatin-induced acute kidney injury by modulating regulatory T cells by the CD206 mannose receptor. Kidney Int. 2015;88(3):550-9. doi: 10.1038/ki.2015.147
  16. Choi KE, Hwang CJ, Gu SM, Park MH, Kim JH, Park JH, et al. Cancer cell growth inhibitory effect of bee venom via increase of death receptor 3 expression and inactivation of NF-kappa B in NSCLC cells. Toxins. 2014;6(8):2210-28. doi: 10.3390/toxins6082210

17. Shiassi Arani F, Karimzadeh L, Ghafoori SM, Nabiuni M. Antimutagenic and synergistic cytotoxic effect of cisplatin and honey bee venom on 4T1 invasive mammary carcinoma cell line. Adv Pharmacol Sci. 2019;1:1-8. doi: 10.1155/2019/7581318 PMID: 30838042

آمار
تعداد مشاهده مقاله: 81
تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 139


سامانه مدیریت نشریات علمی. قدرت گرفته از سیناوب