پیوندهای مفید
اخبار و اعلانات
آمار
| تعداد نشریات | 158 |
| تعداد شماره‌ها | 6,241 |
| تعداد مقالات | 67,872 |
| تعداد مشاهده مقاله | 115,471,961 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 90,241,280 |
تعدیل H2O2 تولید شده گیاه گندم با استفاده از Pseudomonas fluorescens UTPf298 در شرایط بیماری پوسیدگی طوقه و ریشه Fusarium pseudograminearum | ||
| دانش گیاهپزشکی ایران | ||
| دوره 54، شماره 2، اسفند 1402، صفحه 237-246 اصل مقاله (1.11 M) | ||
| نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.22059/ijpps.2023.365908.1007039 | ||
| نویسندگان | ||
| نیلوفر محمدی فشارکی1؛ کیوان بهبودی* 2؛ مجید طالبی3 | ||
| 1گروه گیاهپزشکی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج، ایران. | ||
| 2گروه گیاهپزشکی، دانشکدگان کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج، ایران | ||
| 3گروه بیوتکنولوژی، دانشکده کشاورزی دانشگاه صنعتی اصفهان. اصفهان. ایران | ||
| چکیده | ||
| پوسیدگی طوقه و ریشه ناشی از قارچ Fusarium pseudograminearum یکی از عوامل محدود کننده رشد در کشت گندم است. این بیماری معمولا با قهوه ای شدن کلئوپتیل، غلاف‌های برگ‌های تحتانی، ساقه‌های مجاور و گره‌ها همراه است. برای مقابله با این بیماری، راهکارهای مختلفی از جمله کاربرد باکتری‌های افزایش دهنده رشد گیاه به‌کار گرفته شده است. در این پژوهش جدایه باکتری Pseudomonas fluorescens UTPf298 از خاک‌های آلوده به این بیماری در شهرستان اندیمشک جداسازی و شناسایی شد. این جدایه توانست میزان اتیلن گیاهی را از nmol/g 30 به nmol/g 20 کاهش دهد. در نتیجه کاهش میزان اتیلن، میزان پراکسید هیدروژن که نماینده‌ای از اکسیژن فعال در این پژوهش بود، از µM/g FW 45 در نمونه شاهد تا µM/g FW 27 در نمونه تلقیح شده با باکتری کاهش یافت. خسارت ناشی از عامل پوسیدگی طوقه (شدت بیماری‌زایی) به طور چشمگیری از درجه 4 در شاهد به درجه 2 کاهش یافت. نتایج این پژوهش بیان می کند که تلقیح بذر با جدایه باکتری یاده شده، علاوه بر کنترل بیماری سبب کاهش اتیلن و پراکسید هیدروژن و در نهایت، شدت بیماری‌زایی در گندم شده است. همچنین این باکتری با اثر گذاری بر رشد گیاه باعث تقویت گیاه گندم و افزایش سبزینگی آن شد. | ||
| کلیدواژه‌ها | ||
| اکسیژن فعال؛ تنش زیستی؛ شدت بیماری‌زایی؛ کود زیستی | ||
| عنوان مقاله [English] | ||
| Modulation of H2O2 produced by wheat plant using Pseudomonas fluorescens UTPf298 under Fusarium pseudograminearum crown and root rot disease | ||
| نویسندگان [English] | ||
| Nilofar Mohammadi Fesharaki1؛ Keivan Behboudi2؛ Majid Talebi3 | ||
| 1Department of Plant Protection, College of Agriculture and Natural Resources, University of Tehran, Karaj, Iran | ||
| 2Department of Plant Protection, University of Tehran, Karaj, Iran. | ||
| 3Department of Biotechnology, Isfahan University of Technology, Isfahan, Iran. | ||
| چکیده [English] | ||
| Crown and root rot disease caused by Fusarium pseudograminearum is one of the growth-limiting factors in wheat cultivation. This disease is usually associated with the browning of the coleoptile, lower leaf sheaths, adjacent stems, and nodes. To deal with this disease, various strategies have been used, including the use of bacteria that increase plant growth. In this research, the bacterium Pseudomonas fluorescens strain EB298 was isolated and identified from the soil contaminated with this disease in Andimeshk city. This isolate was able to reduce the amount of plant ethylene from 30 nmol/g to 20 nmol/g. As a result of reducing the amount of ethylene, the amount of hydrogen peroxide, which was representative of active oxygen in this research, decreased from 45 M/gFWµ in the control sample to 27 M/gFWµ in the sample inoculated with bacteria. The damage caused by crown rot fungus (pathogenic intensity) was significantly reduced from grade 4 in the control to grade 2. The results of this research show that seed inoculation with P. fluorescens UTPf298 bacteria, in addition to controlling root rot disease, has reduced ethylene and hydrogen peroxide and ultimately the severity of pathogenicity in wheat. Also, this bacterium, by affecting the growth of the plant, strengthened the plant and the greenness of the wheat plant. | ||
| کلیدواژه‌ها [English] | ||
| Active oxygen, Biological stress, Severity of pathogenicity, Biological fertilizer | ||
| مراجع | ||
|
سمیعی، ف.، جوان نیکخواه، م.، زمانی زاده، ح.ر. و رفیعی کوهرودی، ز. (1387). واکنش تعدادی از ارقام گندم به قارچ Bipolaris sorokiniana عامل پوسیدگی معمولی ریشه. نشریه حفاظت گیاهان (علوم و صنایع کشاورزی). 22: 211-219. محمدی فشارکی، ن.، بهبودی، ک. و طالبی، م. (1400). کارایی Pseudomonas fluorescens strain EB298 (UTPf298) علیه بیماری پوسیدگی طوقه و ریشه گندم Fusarium pseudograminearum و بهبود کارایی رنگدانه های کلروفیل. نشریه کنترل بیولوژیک آفات و بیماری های گیاهی. 10: 89-95. Asha, B.B., Chandra Nayaka, S., Udaya Shankar, A.C., Srinivas, C. and Niranjana, S. R. (2011). Biological control of F.oxysporum f.sp. lycopersici causing wilt of tomato by Pseudomonas fluorescens. Int. J. Microbiol. Res. 3: 79-84. Datta, D., Behera, L., Chaudhary, V. T., Kumar, S., and Bisen, K. (2022). Endophytes: rendering systemic resistance to plants. Rhizosphere microbes. 40: 175–195 Egamberdieva, D., Jabborova, D. and Hashem, A. (2015). Pseudomonas induces salinity tolerance in cotton (Gossypium hirsutum) and resistance to Fusarium root rot through the modulation of indole-3-acetic acid. Saudi Journal of Biological Sciences. 22: 773-779. Fradkin, L. G., Yoshinaga, S. K., Berk, A. J. and Dasgupta, A. (1987). Mol. Cell. Biology. 7: 3880_3887 Ghosh, B., Md, N. A., and Gantait, S. (2016). Response of rice under salinity stress: a review update. Rice Res. 4:167. doi: 10.4172/2375-4338.1000167 Hossain, M. T., and Chung, Y. R. (2019). Endophytic bacillus species induce systemic resistance to plant diseases” in Bacilli and Agrobiotechnology: Phytostimulation and biocontrol. 7: 151–160 Hossain, M. A., Hoque, T. S., Zaid, A., Wani, S. H., Mostofa, M. G., and Henry, R. (2021). Targeting the ascorbate-glutathione pathway and the glyoxalase pathway for genetic engineering of abiotic stress-tolerance in rice, in Molecular Breeding for Rice Abiotic Stress Tolerance and Nutritional Quality. Wiley-Blackwell. 10: 398–427. doi: 10.1002/9781119633174.ch21 Kazan, K., and Gardiner, D. M. (2018). Fusarium crown rot caused by Fusarium pseudograminearum in cereal crops: recent progress and future prospects. Molecular Plant Pathology. 19: 1547-1562. Doi: org/10.1111/mpp.12639. Kaur, H., Bhardwaj, R. D., and Grewal, S. K. (2017). Mitigation of salinity-induced oxidative damage in wheat (Triticum aestivum L.) seedlings by exogenous application of phenolic acids. Acta Physiol. Plant. 39: 221-230. doi: 10.1007/s11738-017-2521-7. Li, Q., Saleh-Lakha, S. and Glick, B. R. (2005). The effect of native and ACC deaminase-containing Azospirillum brasilense Cd1843 on the rooting of carnation cuttings. Can J Microbiol. 51: 511-514. Liu, X., Chen, D., Yang, T., Huang, F., Fu, S., and Li, L. (2019). Changes in soil labile and recalcitrant carbon pools after land-use change in a semi-arid agro-pastoral ecotone in Central Asia. Ecol. Indic. 110:105925. doi: 10.1016/j.ecolind.2019.105925. Mohammai fesharaki, N., Behboudi, K., and Talebi, M. (2022). The effect of Pseudomonas fluorescens strain EB298 (UTPf298) in the control of Fusarium pseudograminearum, the cause of crown and root rot disease and wheat chlorophyll pigments. BIOCINTROL. 10: 89-95. (In Persian with English summary). Navarro-Yepes, J., Burns, M., Anandhan, A., Khalimonchuk, O., Del Razo, L. M., Quintanilla-Vega, B. (2014). Oxidative stress, redox signaling, and autophagy: cell death versus survival. Antioxidants Redox Signal. 21: 66–85. doi: 10.1089/ars.2014.5837. Rasouli Sadaghiani, M.H., Kavazi, K., Rahimian, H., Malakouti, M.J., and Asadi, H.) 2006(. An Evaluation of the Potentials of Indigenous Fluorescent Pseudomonads of Wheat Rhizosphere for Producing Siderophore. J. Soil Water Sci. 20: 133-143. Samiei, F., Javan Nikkhah, M., Zamani zade, H. R., Rafiei Kohrodi. Z. (2008). Response of some wheat cultivars to the fungus Bipolaris sorokiniana, which causes common root rot. Journal of Plant Protection. 22: 211-219. (In Persian with English summary). Sardar, M. F., Abbas, T., Naveed, M., Siddique, S., Mustafa, A., Abbasi, B. (2021). “Biopesticides: importance and challenges” in Pesticide contamination in freshwater and soil environs. Apple Academic Press. 129–151. Shaw, R. J. (1999). Soil salinity – electrical conductivity and chloride. In: Peverill KI, Sparrow LA, Reuter DJ (eds) Soil analysis: an interpretation manual. CSIRO Publishing, Melbourne. 20: 129–146. Splivallo, R.; Fischer, U.; Göbel, C.; Feussner, I.; Karlovsky, P. (2020). Truffles regulate plant root morphogenesis via the production of auxin and ethylene. Plant Physiol. 150: 2018–2029. doi: 10.15666/aeer/1704_82918306 Voesenek, La. C.J., Jackson, M.B., Toebes A.H.W., Huibers, W., Vriezen W.H. and Colmer, T.D. (2003). De-submergence-induced ethylene production in Rumex Palustris: Regulation and ecophysiological significance. The Plant J. 33: 341-352. | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 1,558 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 69 |
||